معلومة

تخليق DNA إضافي في Pachytene و Zygotene

تخليق DNA إضافي في Pachytene و Zygotene


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

لقد قرأت ، أنه في Pachytene و Zygotene يتم تصنيع مادة DNA إضافية ، حوالي 0،3 ، 0،1٪ على التوالي. لماذا هو كذلك؟


يتم تصنيع حوالي 0.3 ٪ من إجمالي مكمل الحمض النووي خلال هاتين المرحلتين كمقياس لآلية إصلاح النسخ المتماثل.

المرجعي:

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/3731943

http://www.nature.com/nature/journal/v219/n5153/abs/219489a0.html


حدوث ودور تخليق الحمض النووي أثناء الانقسام الاختزالي في القمح والجاودار

تمت دراسة دمج 3 H-thymidine في الحمض النووي لخلايا الجاودار المتوسطة في الزيجوتين و pachytene-Diplotene والمراحل الأولى إلى المرحلة النهائية الثانية. تم العثور على مستويات منخفضة من 3 H في الحمض النووي عالي النقاء من الخلايا العضلية في جميع هذه المراحل ، على الرغم من وجود المزيد في الحمض النووي من الخلايا العضلية pachytene-Diplotene ، ومن المحتمل جدًا أن مجموعات الزيجوتين من anthers تحتوي على نسبة في pachytene. لا يمكن تمييز توزيعات الكثافة الطافية للحمض النووي المسمى من خلايا الزيجوتين والباشيتين ديبلوتين ، على عكس الوضع في زنبق، المثال الآخر الوحيد الذي تمت دراسته حتى الآن.

أوقف مثبط تخليق الحمض النووي 2′-deoxyadenosine التطور الانتصافي للأنثرات في الثقافة فقط في أواخر الزيجوتين والباشيتين. لم يثبط التطور في وقت مبكر من الزيجوتين ، ولم يمنع اقتران الكروموسوم كما يحكم عليه الفحص المجهري الضوئي أو يتسبب في تجزئة كروموسوم واسعة النطاق أثناء الزيجوتين كما في زنبق. تشير هذه النتائج إلى أن التوليف المكثف للحمض النووي لا يحدث في الزيجوتين في الحبوب ولا تشير إلى أن تخليق الزيجوتين DNA هو شرط أساسي لاقتران الكروموسوم كما هو الحال في زنبق.

G.W.RW في إجازة تفرغ من قسم علم الوراثة ، جامعة ألبرتا ، إدمونتون ، ألبرتا ، كندا.


Appels R ، Bouchard RA ، Stern H (1982) cDNA المستنسخات من poly (A) + RNA الخاص بالانقسام العضلي في Lilium: التماثل مع متواليات في القمح والجاودار والذرة. الكروموسوما 85: 591-602

Callan HG (1972) تكرار الحمض النووي في كروموسومات حقيقيات النوى. Proc R Soc Lond B 181: 19841

Gonda DK، Radding CM (1983) من خلال البحث العملي عن أزواج بروتين RecA من جزيئات الحمض النووي التي تشترك في امتداد محدود من التماثل. الخلية 34: 647-654

Holm PB (1977) النسخ المتماثل للحمض النووي للكروماتين الحقيقي والكروماتين المغاير في Lilium longiflorum. Carlsberg Res Commun 42: 249-281

Hotta Y ، Shepard J (1973) الجوانب البيوكيميائية لعمل الكولشيسين على الخلايا الانتصافية. مول جينيه 122: 243-260

Hotta Y، Stern H (1965) أنشطة البوليميراز والكيناز فيما يتعلق بتوليف الحمض النووي الريبي أثناء الانقسام الاختزالي. البروتوبلازما 60: 218-232

Hotta Y، Stern H (1971a) تحليل تخليق الحمض النووي أثناء الطور الانقباضي في Lilium. جيه مول بيول 55: 337–355

Hotta Y، Stern H (1971b) بروتين مرتبط بالحمض النووي في خلايا ليليوم. ديف بيول 26: 87-99

Hotta Y، Stern H (1971c) بروتين Meiotic في الخلايا المنوية للثدييات. طبيعة 234: 83-86

Hotta Y، Stern H (1974) فصل وإصلاح الحمض النووي أثناء pachytene في Lilium. الكروموسوما 46: 279 - 296

Hotta Y، Stern H (1975) تسلسلات Zygotene و pachytene في التنظيم الانتصافي للكروموسومات. في: Peacock WJ ، Brock RD (محرران) كروموسوم حقيقيات النوى. مطبعة جامعة نات الأسترالية ، ص 283 - 300

Hotta Y ، Stern H (1976) الانقطاعات المستمرة في النسخ المتماثل المتأخر للحمض النووي أثناء الانقسام الاختزالي في Lilium. الكروموسوما 55: 171 - 182

Hotta Y، Stern H (1981) جزيئات الحمض النووي الريبي النووية الصغيرة التي تنظم إمكانية الوصول إلى نوكلياز في مناطق كروماتينية محددة من الخلايا الانقسام. الخلية 27: 309-319

إيتو إم ، ستيرن هـ (1967) دراسات حول الانقسام الاختزالي في المختبر. I. في الثقافة المختبرية للخلايا الانتصافية. ديف بيول 16: 36-53

كوراتا إن ، إيتو إم (1978) تصوير إشعاعي ذاتي بالمجهر الإلكتروني لـ 3 H-thymidine دمج أثناء مرحلة الزيجوتين في الخلايا المجهرية الزنبق. وظيفة هيكل الخلية 3: 349-356

Laemmli UK (1970) انشقاق البروتينات الهيكلية أثناء تجميع رأس العاثية T4. طبيعة 227: 680-685

Maniatis T ، Fritsch EF ، Sambrook J (1982) الاستنساخ الجزيئي. معمل كولد سبرينج هاربور ، ص 545

Morrison A، Cozzarelli NR (1979) انقسام الحمض النووي الخاص بالموقع بواسطة E. coli DNA gyrase. الخلية 17: 175-174

Moses MJ ، Poorman PA (1981) التحليل المركب Synaptonemal لإعادة ترتيب كروموسومات الفأر. II. تعديل متشابك في ازدواجية ترادفية. الكروموسوما 81: 519-536

Ninnemann H، Epel B (1973) تثبيط انقسام الخلايا بالضوء الأزرق. دقة خلية الخبرة 79: 318–326

راسموسن إس دبليو ، هولم بي بي (1980) ميكانيكا الانقسام الاختزالي. Hereditas 93: 187-216

Roth TF ، Ito M (1967) تشكيل معتمد على الحمض النووي لمركب synaptonemal في الطور الانتصافي. J خلية بيول 35: 247-255

Stern H ، Hotta Y (1967) سلوك الكروموسوم أثناء تطور الأنسجة الانتصافية. في: Goldstein L (محرر) السيطرة على النشاط النووي. برنتيس هول ، ص 47 - 76

ستيرن ه ، هوتا واي (1970) ثقافة الخلايا الانقسام الاختزالي للدراسات البيوكيميائية. في: Prescott DM (ed) Methods in cell physiology، vol. 4. المطبعة الأكاديمية ، ص 497-513

Stern H ، Hotta Y (1974) الضوابط البيوكيميائية للانقسام الاختزالي. آن القس جينيه 7: 37-66

ستيرن هـ ، هوتا واي (1977) الكيمياء الحيوية للانقسام الاختزالي. Phil Trans R Soc Lond B 277: 277–293

Stern H ، Hotta Y (1980) تنظيم استقلاب الحمض النووي أثناء مرحلة إعادة التركيب للانقسام الاختزالي مع إشارة خاصة إلى البشر. مول الخلية الحيوية 29: 145-158

Toledo LA، Bennett MD، Stern H (1979) التحقيقات الخلوية لتأثير الكولشيسين على الانقسام الاختزالي في Lilium hybrid cv. الخلايا المجهرية للجمال الأسود. الكروموسوما 72: 157-173


حول AccessScience

يوفر AccessScience المعلومات العلمية المتاحة الأكثر دقة وموثوقية.

معترف به كبوابة حائزة على جوائز للمعرفة العلمية ، يعد AccessScience موردًا رائعًا عبر الإنترنت يحتوي على مواد مرجعية عالية الجودة مكتوبة خصيصًا للطلاب. يشمل المساهمون أكثر من 10000 عالم مؤهل تأهيلا عاليا و 46 من الحائزين على جائزة نوبل.

أكثر من 8700 مقالات تغطي جميع التخصصات العلمية الرئيسية وتشمل موسوعة ماكجرو هيل للعلوم والتكنولوجيا أمبير و كتاب ماكجرو هيل السنوي للعلوم والتكنولوجيا

115000 زائد تعريفات من قاموس ماكجرو هيل للمصطلحات العلمية والتقنية

3000 السير الذاتية لشخصيات علمية بارزة

أكثر من 19000 صور ورسوم متحركة قابلة للتنزيل توضح الموضوعات الرئيسية

مقاطع فيديو جذابة تسليط الضوء على حياة وعمل العلماء الحائزين على جوائز

اقتراحات لمزيد من الدراسة وقراءات إضافية لتوجيه الطلاب إلى فهم أعمق والبحث

روابط لأدبيات الكتاب مساعدة الطلاب على توسيع معارفهم باستخدام مصادر المعلومات الأساسية


الفصل 11 علم الأحياء الفصل 7 الخلية حلول الكتاب المدرسي

تعد حلول كتاب الأحياء في مجلس ولاية ماهاراشترا حلولًا مهمة جدًا وحاسمة تساعد الطلاب في فهم الموضوعات الصعبة وتساعدهم في التحضير لامتحان المجلس للصف الحادي عشر بالإضافة إلى امتحانات القبول التنافسية الحقيقية أيضًا. ستتحقق دراسة إجابات الأسئلة في كتاب الأحياء المدرسي من فهمك لموضوع معين وتساعدك على تحديد نقاط القوة والضعف لديك.

يتم توفير حلول الكتب المدرسية من الفئة 11 في علم الأحياء للفئة 11 ، وعلم الأحياء الفصل 7 ، قسم الخلية في ولاية ماهاراشترا ، هنا مع تفسيرات تفصيلية بسيطة خطوة بخطوة. تحظى هذه الحلول لقسم الخلية بشعبية كبيرة بين طلاب الصف 11 في علم الأحياء ، الفصل السابع ، حلول تقسيم الخلية سهلة الاستخدام لإكمال واجباتك المنزلية بسرعة والتحضير للامتحانات التنافسية مثل NEET و CET وامتحان القبول الطبي الحقيقي أيضًا. جميع الأسئلة والأجوبة مأخوذة من كتاب علم الأحياء للصف 11 ، يتم توفير حلول الكتاب المدرسي Bjology للفصل 11 في علم الأحياء الفصل 7 هنا من أجلك مجانًا. جميع حلول كتب علم الأحياء للصف 11. حلول للفصل 11 موضوع علم الأحياء ، تم إعداد حلول الكتب المدرسية في علم الأحياء هذه من قبل خبراء في هذا المجال وهي دقيقة بنسبة 100٪ بالنسبة لك.


1. اختر الخيار الصحيح
أ. الرابط الذي يربط بين Meiosis-I
و Meiosis-II هو.
أ. الطور البيني- أنا
ب. الطور الثاني
ج. الحركية
د. طور- أنا

B. Synapsis هو الاقتران.
أ. أي اثنين من الكروموسومات
ب. الكروموسومات غير المتجانسة
ج. الكروماتيدات الشقيقة
د. صبغيات متشابهة

يتم تشكيل جهاز المغزل في أي مرحلة من مراحل الانقسام؟
أ. الطور الأول.
ب. الطورية.
ج. طور.
د. Telophase.

D. عدد الكروموسوم للخلية يكاد يكون تضاعف خلال.
أ. G1- المرحلة
ب. S- المرحلة
ج. G2- المرحلة
د. G0- المرحلة

E. كم عدد الانقسامات الانتصافية اللازمة لتكوين 80 حيوان منوي؟
أ. 80
ب. 40
ج. 20
د. 10

F. كم عدد الكروماتيدات الموجودة في الطور الأول من الانقسام الاختزالي الأول لخلية ثنائية الصبغيات بها 20 كروموسوم?
أ. 4
ب. 6
ج. 20
د. 40

G. في أي من المرحلة التالية من الكروموسومات الانقسام يتم ترتيبها على المستوى الاستوائي?
أ. الطور الأول
ب. الطورية
ج. طور
د. Telophase

ح. البحث عن بيان غير صحيح -
أ. تكثيف مادة الكروماتين
يحدث في الطور.
ب. يتم تشكيل كروماتيدات الابنة في طور الطور.
ج. تتشكل نوى الابنة في الطور الفوقي.
د. يظهر الغشاء النووي في الطور النهائي.

أولا يتم تصنيع بروتينات هيستون أثناء.
أ. المرحلة G1
ب. S- المرحلة
ج. G2
مرحلة
د. الطور البيني


2. أجب على الأسئلة التالية
ج. أثناء ملاحظة الشريحة ، لاحظ الطالب العديد من الخلايا ذات النوى. لكن بعض النوى كانت أكبر مقارنة بالأنوية الأخرى لكن غشاءها النووي لم يكن واضحًا. استنتجها المعلم باعتبارها واحدة من
المرحلة في انقسام الخلية. ما هي المرحلة التي يمكن أن يستنتجها المعلم؟
إجابة : المرحلة التي استنتجها المعلم كانت "Prophase". لأنه في هذه المرحلة ، تبدأ الكروموسومات بالتكثف. إذا حدثت هذه المرحلة في خلايا الحيوان ، فإن المريكزات تبدأ في التحرك في الأطراف أو الأقطاب المعاكسة. يبدأ Mitotic Spindle في الظهور في هذه المرحلة.

ب. أعد الطلاب شريحة من جذر البصل تلميح. كان هناك العديد من الخلايا التي شوهدت تحتها مجهر. كانت هناك خلية بها مجموعتان من الكروموسومات على طرفي نقيض من الخلية. هذه الخلية في أي مرحلة من مراحل الانقسام؟
إجابة : الطور الصاعد هو مرحلة الانقسام الفتيلي التي تكشف عن مجموعتين من الكروموسومات على طرفي نقيض للخلية. لأن الأكثر شيوعًا هو طرف الجذر لدراسة تفاعل الانقسام. يتم سحق رأس البصل مما يسمح بالتسطيح بالمجهر.

تُستخدم بقع الحمض النووي المحددة لعرض الحمض النووي تحت المجهر ، وهي بقع فيولجين وبقع الأسيتوكارمين.

تم عرض بعض شرائح الخلايا السرطانية على الطلاب. أدلى المعلم بتعليق كما لو كان هناك
عنصر تحكم في إحدى مراحل دورة الخلية الخاصة به ، لن يكون هناك & # 8217t حالة مثل هذه. في أي مرحلة كان المعلم
بالاشارة الى؟
إجابة : كانت هذه المرحلة هي المرحلة الأولية ، المرحلة الأولى. يمكن معالجة المرحلة الأولى بالعلاج الكيميائي ولكن لا يمكن السيطرة عليها أو بأي علاج طبي. لا يمكن الشفاء التام من السرطان ولكن يمكن علاجه في المرحلة الأولية ولكن في المرحلة الأخيرة يكون العلاج صعبًا للغاية.

D. بعض المعابر المندلية التجريبية تم عرض النتائج على الطلاب. أخبر المعلم أن هناك جينين موجودين على نفس الكروموسوم. سأل عما إذا كان سيتم فصلهما من بعضهما البعض؟
إجابة : عندما يوجد جينان على نفس الكروموسوم وبقدر ما يقتربان من بعضهما البعض ، فإنهما يتحدىان قانون مندل للتشكيلة المستقلة التي تنص على أن "الأليلات المشفرة لصفات منفصلة يتم تمريرها بشكل مستقل عن بعضها البعض" ولكن ويليام باتسون وإديث ريبيكا سوندرز اكتشف ريجينالد بونيت في عام 1905 ظاهرة الارتباط الجيني ، والتي بموجبها من غير المحتمل أن ينفصل جينان موجودان على نفس الكروموسوم وقريبان من بعضهما البعض ويميلان إلى التوارث معًا. لذلك ، هناك احتمال ضئيل للغاية لفصل الجينين عن بعضهما البعض. ومع ذلك ، فإن أهم اعتبار في هذا الأمر هو المسافة بينهما.

كان الطلاب يشاهدون فيلمًا على
باراميسيوم. خضع لعملية
من التكاثر. قال المعلم إنه بسبب انقسام الخلية. لكن الطلاب اعترضوا وقالوا إنه لا يوجد اختفاء من الغشاء النووي ولا تكوين للمغزل ، فكيف يمكن أن يكون انقسامًا خلويًا؟ يمكنك توضيح؟
إجابة : التكاثر في البراميسيوم يكون من خلال الانشطار الثنائي

التفسير: أثناء التكاثر ، تنقسم النواة الكبيرة بنوع من amitosis ، وتخضع النوى الصغيرة للانقسام. ثم تنقسم الخلية بشكل عرضي ، وتحصل كل خلية جديدة على نسخة من النواة الصغيرة والنواة الكبيرة.

F. هل الانقسام الاختزالي هو المسؤول عن التطور؟ برر جوابك
إجابة : نعم ، الانقسام الاختزالي مسؤول عن التطور. التفسير: أثناء الانقسام الاختزالي ، يحدث إعادة التركيب مما يؤدي إلى تباين في النسل. لذا ، فإن الاختلافات الناتجة عن الانقسام الاختزالي هي عوامل مهمة للتطور

G. لماذا يسمى الانقسام والانقسام الاختزالي الثاني
كقسم متماثل؟
إجابة: يسمى الانقسام المتساوي والانقسام الاختزالي 2 الانقسام المتماثل أو الانقسام المتماثل لأن عدد الكروموسومات يظل متساويًا قبل الانقسام وبعده.

H. اكتب أهمية الانقسام.
إجابة :

  1. ينتج الانقسام الخيطي عن إنتاج خلايا ابنة ثنائية الصبغة ذات تكملة جينية متطابقة عادةً.
  2. تنقسم الخلية عن طريق الانقسام لاستعادة النسبة النووية السيتوبلازمية.
  3. يساعد في إصلاح الخلايا. تؤدي الانقسامات الانقسامية في الأنسجة الإنشائية إلى نمو مستمر للنباتات طوال حياتها.

قم بتجميع المراحل المختلفة من الطور الأول.
إجابة : Prophase I. Prophase I مقسم إلى خمس مراحل: leptotene و zygotene و pachytene و Diplotene و diakinesis.

3. ارسم الصور ذات العلامات واكتب الشرح

أ. بمساعدة الرسم التخطيطي المناسب ،
صف دورة الخلية.
إجابة : الأحداث المتسلسلة التي تحدث في حياة الخلية تسمى دورة الخلية. هناك مرحلتان من دورة الخلية هما الطور البيني والطور M. أثناء الطور البيني ، تخضع الخلية للنمو أو الراحة حسب الحاجة. خلال المرحلة M ، تخضع الخلية للانقسام. تتناوب الطور البيني مع فترة الانقسام.

الطور البيني : Interphase هي المرحلة بين انقسام خلية متتاليين. إنها أطول مرحلة من دورة الخلية تكون خلالها الخلية نشطة للغاية وتستعد لانقسام الخلية. الطور البيني قابل للقسمة إلى ثلاث مراحل فرعية مثل G1-phase و S-phase و G2-phase.

G1- المرحلة : يُعرف هذا أيضًا باسم فترة الفجوة الأولى أو فترة النمو الأولى. يبدأ مباشرة بعد انقسام الخلية. تقوم الخلية بتوليف الحمض النووي الريبي (mRNA و rRNA و t-RNA) وتخليق البروتين وتخليق الأغشية خلال هذه المرحلة.

S- المرحلة : هي مرحلة توليف يتم فيها تصنيع أو تكرار الحمض النووي ، بحيث تتضاعف كمية الحمض النووي لكل خلية. يتم تصنيع بروتينات هيستون أيضًا خلال هذه المرحلة.

المرحلة G2 : G2 هي مرحلة النمو الثانية ،
خلال زيادة النواة في الحجم.
تحدث الأنشطة الأيضية الأساسية لانقسام الخلايا خلال هذه المرحلة. يتم تصنيع البروتينات المختلفة اللازمة لانقسام الخلايا خلال هذه المرحلة. إلى جانب ذلك ، يحدث تخليق الحمض النووي الريبي أيضًا خلال هذه المرحلة. في الخلايا الحيوانية ، يظهر زوج ابنة من المريكزات بالقرب من الزوج الموجود مسبقًا.

م- المرحلة أو فترة الانقسام : تقف 'M'
للانقسام أو الانقسام الاختزالي. تتضمن المرحلة M
الحركية الحركية و الحركية الخلوية. Karyokinesis هو تقسيم النواة إلى نواتين ابنتيتين بينما الحركية الخلوية هي انقسام السيتوبلازم مما يؤدي إلى خليتين ابنتيتين

ب- يميز بين الانقسام والانقسام الاختزالي.
إجابة :
1) يحدث انقسام الانقسام في الخلايا الجسدية ونتيجة لهذا الانقسام يحدث النمو. يحدث Meisis عادة في الخلايا التناسلية ونتيجة لهذه الشخصية ينتقل جيل إلى الآخر.

2) اكتمل الانقسام الخيطي في مرحلة واحدة. اكتمل الانقسام الاختزالي على مرحلتين.

3) الانقسام. الطور أصغر (مقارنة بطور الانقسام الاختزالي). طور الانقسام الاختزالي أطول من طور الانقسام الفتيلي وينقسم إلى خمس محطات فرعية.

4) في الانقسام لا يتم العبور. في الانقسام الاختزالي يحدث العبور حيث يحدث تبادل شرائح الكروماتيدات.

5) لا يحدث التشابك في الطور الاستوائي. في الانقسام الاختزالي ، يحدث التشابك بين الكروموسومات المتجانسة (مرحلة ثنائية التكافؤ).

6) في الطور الاستوائي ، يكون السنترومير باتجاه الصفيحة الاستوائية ونهايات الكروموسومات باتجاه الأقطاب. ينقسم Centromere. في الطور الأول للانقسام الاختزالي ، يكون السنترومير باتجاه أقطاب ونهايات الكروموسومات باتجاه الصفيحة الاستوائية. لا ينقسم Centromere.

7) الكروماتيدات طويلة ورقيقة. في الانقسام الاختزالي ، الكروماتيدات أقصر وسميكة

8) في الانقسام الخلوي يتبع الحركة karyokinesis. في Meiosis Telophase I ، لا يحدث التحلل الخلوي دائمًا (قد يحدث).


ج. ارسم مخطط الطور الطوري.
إجابة :


بالإضافة إلى فصل واحد في علم النبات ، أسئلة وأجوبة حكيمة الفصل 6 دورة الخلية وتقسيم الخلية

بالإضافة إلى دورة خلية واحدة في علم النبات والأسئلة والأجوبة الخاصة بدورة خلية واحدة في قسم الخلية

السؤال رقم 1.
ينتج عن الانقسام الاختزالي
(أ) إنتاج الأمشاج
(ب) انخفاض عدد الكروموسومات
(ج) إدخال التباين
(د. كل ما ورداعلاه
إجابة:
(د. كل ما ورداعلاه

السؤال 2.
في أي مرحلة من الانقسام الاختزالي يتم تحديد التكوين الجيني للأمشاج أخيرًا
(أ) الطور الأول
(ب) الطور الثاني
(ج) الطور الثاني
(د) الطور الأول
إجابة:
(د) الطور الأول

السؤال 3.
يحدث الانقسام الاختزالي في الكائنات الحية أثناء
(التكاثر اللاجنسي
(ب) التكاثر الخضري
(ج) كل من التكاثر الجنسي والنباتي
(د) لا شيء مما سبق
إجابة:
(التكاثر اللاجنسي

السؤال 4.
خلال طور الطور- l من الانقسام الاختزالي
(أ) فصل الكروموسومات المتجانسة
(ب) الجسيمات الذاتية غير المتجانسة منفصلة
(ج) فصل الكروماتيدات الشقيقة
(د) فصل الكروماتيدات غير الشقيقة
إجابة:
(أ) فصل الكروموسومات المتجانسة

السؤال 5.
يتميز الانقسام الخيطي
(أ) قسم التخفيض
(ب) القسمة المتساوية
(ج) كل من التخفيض والقسمة المتساوية
(د) لا شيء مما سبق
إجابة:
(ب) القسمة المتساوية

السؤال 6.
يتكون ثنائي التكافؤ من الانقسام الاختزالي- l من
(أ) كروماتيدان وسنترومير واحد
(ب) اثنان من الكروماتيدات واثنان من السنترومير
(ج) أربعة كروماتيدات واثنان من السنترومير
(د) أربعة كروماتيدات وأربعة سنترومير
إجابة:
(ج) أربعة كروماتيدات واثنان من السنترومير

السؤال 7.
من المحتمل أن تكون الخلايا التي لا تنقسم عند
(أ) G1
(ب) G2
(ج) اذهب
(د) المرحلة S.
إجابة:
(ج) اذهب

السؤال 8.
ما نوع انقسامات الخلايا التي تحدث في الخلية البائسة لقمة الجذر؟
إجابة:
الانقسام المتساوي

السؤال 9.
في أي مرحلة يحدث التخفيض الفعلي لعدد الكروموسوم في الانقسام الاختزالي.
إجابة:
الطور 1

السؤال 10.
أعط مصطلح فشل فصل الكروموسومات المتجانسة.
إجابة:
عدم الانفصال

السؤال 11.
قم بتسمية انقسامات الخلايا التي تساعد في نمو الجينات وإعادة تركيبها.
إجابة:
الانقسام والانقسام الاختزالي

السؤال 12.
لوحظ أن خلايا القلب لا تظهر انقسام الخلايا. لا تنقسم هذه الخلايا أكثر وتخرج من مرحلة ____ للدخول إلى مرحلة غير نشطة تسمى ____ من دورة الخلية. إملأ الفراغات.
إجابة:
جي1 وج0

السؤال 13.
في حالة الخلايا النباتية ، يبدأ تكوين جدار خلوي جديد بسلائف بسيطة. ما هي هذه السلائف؟
إجابة:
صفيحة وسطية

السؤال 14.
يقال إن الدورة الواحدة لانقسام الخلايا في الخلايا البشرية (الخلايا حقيقية النواة) تستغرق 24 ساعة. أي مرحلة من الدورة ، برأيك ، تشغل الجزء الأقصى من دورة الخلية؟
إجابة:
الطور البيني.

السؤال 15.
في أي مرحلة من دورة الخلية يتم تكوين الحمض النووي؟
إجابة:
المرحلة الفرعية من الطور البيني

السؤال 16.
إذا حدث فشل انقسام السيتوبلازم بعد الانقسام النووي ، فماذا سيحدث للخلية؟
إجابة:
تتشكل النوى الحرة

السؤال 17.
الأنثر لديه 1200 حبة لقاح. كم عدد الخلايا الأم لحبوب اللقاح التي يجب أن تكون موجودة لإنتاجها؟
إجابة:
300 خلية أم لقاح

السؤال 18.
ما هي خصوصية الزيجوتين؟
إجابة:
يُطلق على اقتران الكروموسوم المتماثل المسمى المشبك

السؤال 19.
إنها المرحلة غير النشطة من انقسام الخلية ولكن يحدث تمايز الخلايا. أطلق عليه اسما.
إجابة:
جي0 المرحلة / المرحلة Quiscent.

بالإضافة إلى ذلك ، دورة خلية نباتية واحدة وأسئلة وأجوبة عن قسم الخلية

السؤال رقم 1.
الانقسام الاختزالي هو نوع الانقسام الخلوي الذي يحافظ على السباق. مناقشة.
إجابة:
يقلل عدد الكروموسوم إلى النصف ، بحيث يتم الحفاظ على عدد الكروموسوم في الجيل التالي.

السؤال 2.
يشار أحيانًا إلى الطور البيني في دورة الخلية بمرحلة الراحة. هل تعتبر هذه العبارة صحيحة؟ أثبت إجابتك.
إجابة:
لا.

السؤال 3.
يظهر هنا رسم تخطيطي لدورة الخلية النموذجية للنبات الأعلى. حدد كل مرحلة من مراحل الدورة واشرح ما يحدث خلال هذه المراحل.

إجابة:

  • جي1 & # 8211 الفجوة الانقسامية - تخليق الحمض النووي الريبي والبروتينات
  • S & # 8211 مرحلة التوليف & # 8211 تكرار الحمض النووي
  • جي2 & # 8211 يستمر توليف مرحلة ما بعد الفجوة الانقسامية للـ RNA & ampProteins
  • M & # 8211 المرحلة الانقسامية
  • جي0 & # 8211 مرحلة غير نشطة

السؤال 4.
يختلف التحلل الخلوي في الخلايا النباتية والحيوانية. إثبات هذا البيان.
إجابة:

السؤال 5.
تحليل العمود A و B ترتيب الأمر مناسب.

السؤال 6.
حدد مراحل الانقسام الخيطي التي تحدث فيها الأحداث التالية:

السؤال 7.
يتم إعطاء مراحل مختلفة من Prophase I of Meiosis في العمود A ، وقم بترتيبها بالترتيب الصحيح ومطابقتها مع الأحداث الموجودة في العمود B.

أ ب
ط) ديبلوتين أ) تصبح الكروموسومات مرئية تدريجياً تحت المجهر الضوئي
ب) باتشيتين ب) اقتران الكروموسومات المتجانسة
ثالثا) ليبتوتين ج) ظهور عقيدات إعادة التركيب والعبور يحدث
رابعا) الزيجوتين د) حل المركب synaptonemal وفصل ثنائي التكافؤ.
ه) إنهاء Chiasmata

السؤال 8.
يسمى اقتران الكروموسومات المتجانسة بالتشابك.

  1. قم بتسمية كل زوج من الكروموسومات المتجانسة.
  2. قم بتسمية مرحلة الطور الأولي التي تحدث فيها.

السؤال 9.
يتم حفظ عدد الكروموسوم المحدد لكل نوع عبر الأجيال في الكائنات الحية التي تتكاثر جنسيًا. ما هو سبب ذلك؟ اكتب الخطوات المختلفة لهذه العملية.
إجابة:

السؤال 10.
تسمى دورة حياة الخلية دورة الخلية. يتكون من أربع مراحل مثل Gv S و G2 و M.

  1. قم بإنشاء مخطط دائري يوضح المراحل المختلفة المشار إليها أعلاه.
  2. اذكر الأحداث الرئيسية التي تحدث في مراحل G و S و G2.

إجابة:
1. مخطط دائري لدورة الخلية.

2. G1 المرحلة -1 ، تنمو الخلية في الحجم وتجهز الآلية اللازمة لتكرار الحمض النووي. يتم تصنيع الحمض النووي الريبي والبروتينات. المرحلة S & # 8211 تكرار الحمض النووي. المرحلة G2 & # 8211 تخليق الحمض النووي الريبي والبروتينات.

السؤال 11.
رتب المراحل التالية من دورة الخلية بالتسلسل الصحيح S ، G2 ، G1 ، M.
إجابة:
S ، M ، G1 ، S ، G2

السؤال 12.
تحدث بنية على شكل X تسمى & # 8216chiasmata أثناء مرحلة معينة من انقسام الخلية.

السؤال 13.
فيما يلي المراحل الخمس من المرحلة الأولى من الانقسام الاختزالي الأول. رتبهم بالترتيب الصحيح.
زيجوتين ، دياكينيسيس ، ديبلوتين ، ليبتوتين ، باتشيتين
إجابة:
Leptotene ، Zygotene ، Pachytene ، دبلوتين و diakinesis

السؤال 14.
أعط المصطلح العلمي لما يلي.

  1. تبادل المادة الوراثية بين الكروماتيدات غير الشقيقة للكروموسومات المتماثلة
  2. مستوى محاذاة الكروموسومات في الطور الفوقي

السؤال 15.
حدد الرسم التخطيطي وقم بتسمية أ ، ب ، ج واكتب الأحداث أثناء ذلك.

إجابة:
(أ) G1
(ب) S.
(ج) G2

  • G1 & # 8211 الفاصل الزمني بين الانقسام وبدء تكرار الحمض النووي.
  • S & # 8211 يحدث تخليق الحمض النووي أو تكرار الحمض النووي.
  • G2 & # 8211 في هذه المرحلة يتم تصنيع البروتينات من أجل الانقسام.

السؤال 16.
لقد قمت بتزويد مجموعة من الشرائح الزجاجية التي تعرض تكوين الأمشاج أو تشكيل العقيق في حيوان في إحدى الشرائح ، لاحظت الميزات التالية. أربع خلايا بها عدد أحادي الصبغيات من الكروموسومات. أخبرك صديقك أن هذا تقسيم انتصافي. (تلميح: العدد ثنائي الصبغيات للكروموسوم هو 16.)
هل توافق على هذا البيان. برر جوابك.
إجابة:
نعم فعلا. يحدث الانقسام الاختزالي في خلية ثنائية الصبغة أو خلية عضلية لتشكيل أربع خلايا أحادية الصيغة الصبغية. تحتوي هذه الخلايا على 8 كروموسومات لكل منها.

السؤال 17.
التفريق بين قسم الاختزال والقسمة المعادلة.
إجابة:
1 - قسم التخفيض:
يحدث في الخلايا ثنائية الصبغيات لتشكيل 4 خلايا أحادية الصيغة الصبغية ، أي أن عدد الكروموسوم ينخفض ​​إلى النصف في Meiosis I وينتج خليتان ابنتان ، والتي تنقسم مرة أخرى لتشكيل 4 خلايا ابنة. جميع الخلايا المتكونة في الانقسام الاختزالي أحادية العدد.

2 - الشعبة المعادلة:
ينتج عن الانقسام الانقسامي خليتان ابنتان تحملان نفس مجموعة الكروموسومات مثل تلك الموجودة في الخلية الأم. لا يحدث اختلاف جيني.

السؤال 18.
هل يمكن أن يكون هناك انقسام دون تكرار الحمض النووي في المرحلة S؟
إجابة:
لا يمكن أن يكون هناك انقسام دون تكرار الحمض النووي في 5 مراحل من الطور البيني لأن المحفز للانقسام هو اضطراب نسبة الخلايا النووية الناجم عن تكرار الحمض النووي في المرحلة S. يعيد الانقسام المتساوي كمية المادة الوراثية إلى مستوى النوع المحدد.

السؤال 19.
كيف تختلف طور الانقسام الطور الأول والطور الأول للانقسام الاختزالي عن بعضهما البعض؟
إجابة:
في الطور الصاعد ، يتم فصل كروماتيدات الانقسام بينما في الطور الأول من الانقسام الاختزالي ، يتم فصل الكروموسومات المتجانسة.

السؤال 20.
كيف يختلف التحلل الخلوي في الخلايا النباتية عن الخلايا الحيوانية؟
إجابة:
1. في خلية حيوانية ، ينضم ثلم في غشاء البلازما. lt في المركز ويقسم سيتوبلازم الخلية إلى قسمين.

2. الخلايا داخل النبات ، يبدأ تكوين الجدار في مركز الخلية وينمو للخارج ليلتقي بالجدران الجانبية الموجودة. ثم يحدث انقسام الخلية.

السؤال 21.
كيف يختلف التحريك الخلوي في الحيوان والخلية النباتية؟
إجابة:
يحدث التحلل الخلوي في الخلية النباتية عن طريق تكوين لوحة الخلية بينما يحدث في الخلية الحيوانية عن طريق تكوين ثلم الخلية.

السؤال 22.
لماذا يسمى الانقسام الانقسام المتساوي؟ إعطاء حدوث الانقسام.
إجابة:
يحافظ على عدد الكروموسوم ثابتًا. يحدث في الخلايا الجسدية.

السؤال 23.
ما هي ميزة الكروموسوم المترية؟
إجابة:
يحتوي الكروموسوم المترامي على مركز مركزي في المنطقة الوسطى بذراعين متساويين من الكروموسوم.

السؤال 24.
ما هو kinetochore؟ أعط وظيفتها.
إجابة:
إنها منطقة شبيهة بالقرص في كل كروماتيد وهي موقع ارتباط الأنابيب الدقيقة للمغزل.

السؤال 25.
لماذا يعتبر الانقسام الاختزالي أساسًا في الكائنات الحية التي تتكاثر جنسيًا؟
إجابة:
يقلل الانقسام الاختزالي من عدد الكروموسوم إلى النصف حيث يتبعه الإخصاب الذي يعيد الصبغيات.

السؤال 26.
قم بتسمية مرحلة دورة الخلايا التي يحدث فيها أحد الأحداث التالية.

  1. يتم نقل الكروموسومات إلى خط استواء المغزل
  2. ينفصل Centromere عن الانقسامات والكروماتيدات
  3. الاقتران بين الكروموسومات المتجانسة. يحدث
  4. يحدث العبور بين الكروموسومات المتجانسة.

السؤال 27.
تحدث متلازمة داونز ومتلازمة كلاينفيلتر & # 8217 بسبب خطأ في انقسام الخلايا. ماذا تشير؟
إجابة:
يرجع ذلك إلى فشل فصل الكروموسومات المتجانسة أثناء الانقسام الاختزالي.

السؤال 28.
الأحداث التي تحدث في الطور الأولي والطور النهائي هي واحدة معاكسة للآخر ،

  1. قم بتسمية هياكل الخلايا الموضحة بالأحداث المذكورة أعلاه
  2. كم عدد نوى ابنة تتشكل في نهاية الطور الانقسامي والانقسام الاختزالي؟

السؤال 29.
التثلث الصبغي أو المنغولية يرجع إلى فشل حدث واحد في انقسام الخلية.

  1. ما هو مستوى الخلايا ثنائية النواة ورباعية الخلايا في الانقسام الاختزالي؟
  2. كيف يحدث ذلك؟
  1. Dyad & # 8211 فرداني ، تتراد & # 8211 Haploid
  2. يحدث في الانقسام الاختزالي بسبب فصل الكروموسومات المتجانسة وعدد الكروموسومات تقلص إلى النصف.

بالإضافة إلى دورة خلية واحدة في علم النبات وأسئلة وأجوبة حول قسم الخلية المكونة من ثلاثة أقسام

السؤال رقم 1.
في أي مرحلة من مراحل الانقسام الاختزالي يتم تشكيل ما يلي؟ اختر الإجابات من نقاط التلميح الواردة أدناه.

  1. مجمع سينابتونيمال ______
  2. عقيدات إعادة التركيب ______
  3. ظهور / تفعيل إنزيم recombinase _____
  4. إنهاء chiasmata _______
  5. Interkinesis ________
  6. تكوين ثنائي الخلايا ________
  1. الزيجوتين
  2. باتشيتين
  3. باتشيتين
  4. دياكينيسيس
  5. بعد الانقسام الاختزالي الأول قبل الانقسام الاختزالي الثاني
  6. بعد أول تحرك خلوي

السؤال 2.
تعد مرحلة الطور البيني مهمة في انقسام الخلايا الانقسامية والانقسام

  1. أعط حدثا محددا
  2. اسم مرحلة الطور البيني الذي يحدث هذا الحدث
  3. كيف ستفرق بين الطور البيني والحركة البينية؟
  1. تكرار الحمض النووي
  2. S & # 8211 المرحلة
  3. الطور البيني & # 8211 خلية تستعد لتقسيم الخلايا Interkinesis & # 8211 فترة قصيرة بين الانقسام الاختزالي الأول والانقسام الاختزالي الثاني

السؤال 3.
تقع الأحداث التالية خلال المراحل المختلفة لدورة الخلية ، اكتب المرحلة مقابل كل حدث من الأحداث.

السؤال 4.
تسمى دورة حياة الخلية دورة الخلية. المرحلة "S" هي مرحلة مهمة من دورة الخلية.

  1. برر جوابك.
  2. قم بتسمية مراحل دورة الخلية التي تحدث فيها الأحداث التالية.
    • عبور الكروموسوم المتماثل.
    • اقتران الكروموسومات المتجانسة.
    • يتم ترتيب الكروموسومات على المستوى الاستوائي.
  1. مرحلة تخليق الحمض النووي
  2. مراحل دورة الخلية
    • باتشيتين
    • الزيجوتين
    • الطورية

السؤال 5.
اسم مراحل انقسام الخلية التي تحدث فيها الأحداث التالية؟

  1. يتم نقل الكروموسومات إلى خط استواء المغزل.
  2. تنفصل انقسامات Centromere والكروماتيدات.
  3. يحدث العبور بين الكروموسومات المتجانسة.

السؤال 6.
طابق الكلمات المدرجة في العمود الأول بالكلمات المناسبة من العمود الثاني.

  1. أ) & # 8211 الانقسام الاختزالي الجامي
  2. ب) & # 8211 التقسيم النووي
  3. ج) & # 8211 الانقسام الاختزالي البقري
  4. د) & # 8211 الانقسام السيتوبلازمي
  5. ه) & # 8211 الخلايا Meiocytes
  6. و) & # 8211 الخلايا النباتية

Plus One Botany Cell Cycle and Cell Division NCERT Mark أسئلة وأجوبة

السؤال رقم 1.
التمييز بين الحركية الخلوية من الحركة الحركية.
إجابة:
يسمى تقسيم السيتوبلازم بالحركة الخلوية ، بينما يسمى تقسيم النواة بالحركة الحركية.

السؤال 2.
ما هي G0 (المرحلة الهادئة) لدورة الخلية؟
إجابة:
لا يبدو أن بعض الخلايا في الحيوانات البالغة تظهر انقسامًا (على سبيل المثال ، خلايا القلب والعديد من الخلايا الأخرى تنقسم من حين لآخر فقط ، حسب الحاجة لاستبدال الخلايا التي فقدت بسبب الإصابة أو موت الخلايا.

لا تنقسم هذه الخلايا بعد ذلك إلى خروج G1 المرحلة لدخول مرحلة غير نشطة تسمى المرحلة الهادئة (G0) من دورة الخلية. تظل الخلايا في هذه المرحلة نشطة من الناحية الأيضية ولكنها لم تعد تتكاثر ما لم يُطلب منها ذلك اعتمادًا على متطلبات الكائن الحي.

السؤال 3.
وصف الحدث الذي يحدث أثناء الطور البيني.
إجابة:
ينقسم الطور البيني إلى ثلاث مراحل أخرى:
1. جي1 المرحلة (الفجوة 1). جي1 المرحلة يتوافق مع الفترة الفاصلة بين بدء الانقسام لتكرار الحمض النووي. خلال المرحلة G ، تكون الخلية نشطة أيضيًا وتنمو باستمرار ولكنها لا تكرر الحمض النووي الخاص بها.

2. المرحلة S (التوليف). يشير S أو مرحلة التوليف إلى الفترة التي يحدث خلالها تخليق أو تكرار الحمض النووي.

3. خلال هذا الوقت تتضاعف كمية الحمض النووي لكل خلية. إذا تم الإشارة إلى المقدار الأولي من الحمض النووي على أنه 2C ، فإنه يزداد إلى 4C. ومع ذلك ، لا توجد زيادة في عدد الكروموسوم ، إذا كان للخلية عدد ثنائي الصبغيات أو عدد 2n من الكروموسومات في G1، حتى بعد المرحلة S ، يظل عدد الكروموسومات كما هو ، أي 2n.

4. ز2 المرحلة (الفجوة 2). في الخلايا الحيوانية ، خلال المرحلة S ، يبدأ تكرار الحمض النووي في النواة ، ويتكرر المريكز في السيتوبلازم خلال G2 المرحلة ، يتم تصنيع البروتينات استعدادًا للانقسام يستمر نمو الخلايا البيضاء.

السؤال 4.
لماذا يسمى الانقسام الانقسام المتساوي؟
إجابة:
نظرًا لأن عدد الكروموسومات يظل كما هو في خلايا الوالدين والبنت ، فإن الانقسام الفتيلي يسمى أيضًا الانقسام المعادل.

السؤال 5.
قم بتسمية مرحلة دورة الخلية التي يقع فيها أحد الأحداث التالية.

  1. يتم نقل الكروموسومات إلى خط استواء المغزل.
  2. تنفصل انقسامات Centromere والكروماتيدات.
  3. يحدث الاقتران بين الكروموسومات المتجانسة.
  4. يحدث العبور بين الكروموسومات المتجانسة.

السؤال 6.
ما هي أهمية الانقسام الاختزالي؟
إجابة:
أهمية الانقسام الاختزالي:

  1. الحفاظ على الهوية الجينية بالحفاظ على عدد الكروموسومات.
  2. جلب الاختلافات لضمان أفضل الأنواع.
  3. يسهل التكاثر الجنسي.

السؤال 7.
ناقش مع معلمك حول.

  1. الحشرات الفردية والنباتات السفلية حيث يحدث الانقسام الخلوي ، و
  2. بعض الخلايا أحادية الصيغة الصبغية في النباتات العليا حيث لا يحدث انقسام الخلايا.
  1. ذكور النحل والدبابير والنمل هي كائنات أحادية العدد لأنها تنتج من بيض غير مخصب.
  2. التآزر والخلايا المضادة للوجه في البويضة لا تخضع لانقسام الخلايا.

السؤال 8.
هل يمكن أن يكون هناك انقسام دون تكرار الحمض النووي في مرحلة & # 8216S؟
إجابة:
يعد تكرار الحمض النووي ضروريًا لانقسام الخلايا ، ولا يمكن أن يحدث الانقسام الخلوي بدون تكرار الحمض النووي.

السؤال 9.
هل يمكن أن يكون هناك تكرار للحمض النووي دون انقسام الخلية؟
إجابة:
يحدث تكرار الحمض النووي من أجل التحضير لانقسام الخلايا. انقسام الخلية هو الخطوة المنطقية التالية بعد تكرار الحمض النووي.

السؤال 10.
قم بتحليل الأحداث خلال كل مرحلة من مراحل دورة الخلية ولاحظ كيف تتغير المعلمتان التاليتان

  1. يظل عدد الكروموسومات كما هو بعد انقسام الخلايا الانقسامية ويصبح النصف بعد انقسام الخلايا الانقسامية.
  2. خلال المرحلة S ، يتضاعف محتوى الحمض النووي ، لكن عدد الكروموسومات يظل كما هو.

بالإضافة إلى دورة خلية واحدة في علم النبات وتقسيم الخلية ، أسئلة وأجوبة متعددة الاختيارات

السؤال رقم 1.
الانقسام هو شكل فريد من أشكال انقسام الخلايا الانقسامية التي
(أ) لا يوجد نمو للخلايا
(ب) النواة لا تشارك
(ج) لا يتطور أي مغزل لتوجيه الخلايا
(د) لا تنفصل أغشية البلازما للخلايا الوليدة.
إجابة:
(أ) لا يوجد نمو للخلايا

السؤال 2.
في الخلايا الحيوانية ، ينطوي الانقسام الخلوي
(أ) فصل الكروماتيدات الشقيقة
(ب) تقلص الحلقة المقلصة للخيوط الدقيقة
(ج) إزالة البلمرة من الأنابيب الدقيقة الحركية
(د) بروتين كيناز يفسفر الإنزيمات الأخرى
إجابة:
(ب) تقلص الحلقة المقلصة للخيوط الدقيقة

السؤال 3.
أثناء الانقسام ، يحصل عدد الكروموسومات
(تغيير
(ب) لا تغيير
(ج) ربما تتغير إذا كانت الخلية ناضجة
(d) maybe change if cell is immature
إجابة:
(b) no change

السؤال 4.
A diploid living organism develops from zygote by which type of the following repeated cell divisions?
(a) Meiosis
(b) Amitosis
(c) fragmentation
(d) Mitosis
إجابة:
(d) Mitosis

السؤال 5.
If you are provided with root-tips of onion in your class and are asked to count the chromosomes, which of the following stages can you most conveniently look into?
(a) Metaphase
(b) Telophase
(c) Anaphase
(d) Prophase
إجابة:
(a) Metaphase

السؤال 6.
At which stage of mitosis, chromatids separated and passes to different poles
(a) prophase
(b) Metaphase
(c) anaphase
(d) Telophase
إجابة:
(c) anaphase

السؤال 7.
The two chromatids of a metaphase chromosome represent
(a) replicated chromosomes to be separated at anaphase
(b) homologous chromosomes of a diploid set
(c) non-homologous chromosomes joined at the centromere
(d) maternal and paternal chromosomes joined at the centromere
إجابة:
(a) replicated chromosomes to be separated at anaphase

السؤال 8.
The process of cytokinesis refers to the division of
(a) nucleus
(b) chromosomes
(c) cytoplasm
(d) nucleus and cytoplasm
إجابة:
(c) cytoplasm

السؤال 9.
Which of the following serves as mitotic spindle poison?
(a) Ca2
(b) azide
(c) Tubulin
(d) Colchicine
إجابة:
(d) Colchicine

السؤال 10.
Pairing of homologous chromosomes occurs at which stage?
(a) Zygotene
(b) Leptotene
(c) Metaphase
(d) Pachytene
إجابة:
(a) Zygotene

السؤال 11.
In meiosis, division is
(a) I reductional and II equational
(b) I equational and II reductional
(c) Both reductional
(d) Both equational
إجابة:
(a) I reductional and II equational

السؤال 12.
Which type of chromosomes segregate when a cell undergoes meiosis?
(a) Homologous chromosomes
(b) Non-homologous chromosomes
(c) Both (a) and (b)
(d) centric and acentric chromosomes
إجابة:
(a) Homologous chromosomes

السؤال 13.
Chiasmata are most appropriately observed in meiosis during
(a) diakinesis
(b) diplotene
(c) metaphase-ll
(d) pachytene
إجابة:
(b) diplotene

السؤال 14.
During cell division, sometimes there will be failure of separation of homologous chromosomes. This event is called
(a) interference
(b) complementation
(c) non-disjunction
(d) coincidence
إجابة:
(c) non-disjunction

السؤال 15.
The second meiotic division leads to
(a) separation of sex chromosomes
(b) fresh DNA synthesis
(c) separation of chromatids and centromere
(d) separation of homologous chromosomes.
إجابة:
(c) separation of chromatids and centromere

السؤال 16.
Term meiosis was proposed by
(a) Farmer and Moore
(b) Flemming
(c) Strasburger
(d) Darlington
إجابة:
(a) Farmer and Moore

السؤال 17.
Synapsis occurs in the phase of meiosis.
(a) zygotene
(b) diplotene
(c) pachytene
(d) leptotene
إجابة:
(a) zygotene

السؤال 18.
When the number of chromosomes is already reduced to half in the first reductional division of meiosis, where is the necessity of second meiotic division
(a) The division is required for the formation of four gametes
(b) Division ensures equal distribution of haploid chromosomes
(c) Division ensures equal distribution of genes on chromosomes
(d) Division is required for segregation of replicated chromosomes
إجابة:
(d) Division is required for segregation of replicated chromosomes


Mechanisms of recombination

Recombination occurs when a piece of the paternal chromosome is swapped for the homologous piece of DNA on the matching maternal chromosome (or vice versa). Obviously, this kind of a DNA swap must be done carefully and with equivalence, so that the resultant DNA does not gain or lose information. To ensure this precision in recombination, the non-sister homologous chromatids are held together via proteins in a synaptonemal complex (SC) during prophase I. This ladder-like complex begins to form in the zygotene stage of prophase I and completes in pachytene. The complete SC consists of proteinaceous lateral elements (aka axial elements) that run along the length of the chromatids and a short central element composed of fibrous proteins forming the rungs of the ladder perpendicular to the two lateral elements.

Recombination may occur with or without the formation of double-strand breaks, and in fact, can occur without the formation of the synaptonemal complex, although the SC probably enhances the efficiency of recombination. في S. بومبي, meiosis occurs without the formation of a synaptonemal complex, but there are small discontinuous structures somewhat similar to parts of the SC. In the fruit fly, Drosophila melanogaster, females undergo meiosis using a synaptonemal complex, but males do not undergo meiotic recombination, and their chromosomes do not form synaptonemal complexes. In most cases, recombination is preceded by the formation of recombination nodules, which are protein complexes that form at potential points for recombination.

The best studied mechanism for meiotic recombination involves a double-stranded break of one of the chromosomes initiated by the meiosis-specific endonuclease, Spo11. The 5&rsquo ends (one in each direction) of this cut are degraded slightly to form 3&rsquo single-stranded overhangs. These unpaired ends lead to the formation of Holliday junctions (named after Robin Holliday) with a strand from another chromatid acting as a template for synthesis of the missing portion of the chromatids, leading to two sister chromatids that are "entangled" by having one strand of DNA paired with a different chromatid. This entanglement may be resolved with or without a crossover. The recombination is initiated in pachytene and completes in diplotene, at which time the synaptonemal complex breaks down. As the chromatids begin to separate, chiasmata (sites where chromatids remain in contact) become apparent at some of the recombination sites. As prophase completes, the chiasmata resolve from the center of the chromosomes to the ends.

Figure (PageIndex<2>). Recombination of homologous chromosomes.

Video (PageIndex<1>): In this animation, explore how a Holliday junction is formed, and how it can subsequently be resolved. (www.youtube.com/watch?v=MvnWxN81Qps)


المواد والأساليب

Plant Material and Genotyping

The maize (زيا ميس) UFMu-07260 mutant line (ZmmtopVIB-1) in the W22 inbred background was obtained from the UniformMu stock center of MaizeGDB (https://maizegdb.org/ McCarty et al., 2013). Another mutant allele, EMS4-0742ae (ZmmtopVIB-2) in the B73 inbred background, was obtained from the Maize EMS Induced Mutant Database (http://www.elabcaas.cn/memd/ Lu et al., 2018). All plants were cultivated and fertilized under normal field conditions during the growing season or in a growth chamber (16 h light at 28ଌ, 8 h dark at 22ଌ, 60% to 70% humidity). Maize genomic DNA was extracted using a method previously described (Li et al., 2013). Primers used for genotyping and sequencing of the two mutant alleles are listed in Supplemental Table S1.

Pollen Viability

Pollen viability was assessed using the Alexander staining method (Alexander, 1969 Johnson-Brousseau and McCormick, 2004). Mature pollen grains were dissected out of anthers from the wild type and ZmmtopVIB mutants during the pollination stage and then stained with 10% Alexander solution. Images of stained pollen grains were taken using a Leica EZ4 HD stereo microscope equipped with a Leica DM2000 LED illumination system.

RT-qPCR Analysis

Total RNA was isolated from root, stem, leaf, developing embryo, endosperm, young tassel, and young ear using a TRNzol-A + Kit Reagent (TIANGEN) according to the manufacturer’s instructions. Reverse transcription was performed using a PrimeScript II first strand cDNA Synthesis Kit (TaKaRa) with Oligo-T primers to obtain cDNA. Quantitative PCR was conducted with a 7500 Fast Real-Time PCR System (Applied Biosystems) using SYBR Green Master Mix (TaKaRa). All reactions were performed with three biological replicates and technical repeats. Gene-specific primers and reference gene (Ubiquitin) primers for internal control are listed in Supplemental Table S1.

Meiotic Chromosome Preparation and DAPI Staining

Young tassels were fixed in Carnoy’s solution (ethanol:glacial acetic acid [3:1]) for 1 d at room temperature and then stored in 70% (v/v) ethanol at 4ଌ. Anthers were dissected in 45% (v/v) acetic acid solution. Meiocytes were squeezed from anthers and squashed onto slides using coverslips. Slides were frozen in liquid nitrogen and the coverslips were removed immediately. After serial dehydration in 70%, 90%, and 100% (v/v) ethanol, the air-dried slides were stained and mounted with DAPI in Vectashield antifade medium (Vector Laboratories).

FISH and Chromosome Painting

Chromosome spreads were prepared by the method described previously (Wang et al., 2006). Three repetitive DNA probes were used, including the pTa794 clone containing 5S rDNA repeats (Li and Arumuganathan, 2001), the pAtT4 clone containing telomere-specific repeats (Richards and Ausubel, 1988), and cy5-conjugated 180-bp knob oligonucleotides. The rDNA and telomere probes were labeled by the Nick Translation Kit (Roche). The chromosome 3 painting probe was labeled with ATTO-550 as previously described (Albert et al., 2019). Slides were counterstained using DAPI in antifade mounting medium (Vector Laboratories). Chromosome images were captured under a Ci-S-FL fluorescence microscope (Nikon) equipped with a DS-Qi2 microscopy camera (Nikon) or under a Delta Vision ELITE system (GE Healthcare) equipped with an Olympus IX71 microscope.

Immunofluorescence Assay

Immunofluorescence was performed as described previously (Pawlowski et al., 2003), with minor modifications. After being dissected and permeabilized in 1× buffer A solution with 4% (w/v) paraformaldehyde for 30 min at room temperature, fresh young anthers were washed twice in 1× buffer A at room temperature and then stored in 1× buffer A at 4ଌ. Meiocytes were squeezed from anthers and squashed onto slides. After freezing in liquid nitrogen, coverslips were removed immediately. The meiocytes were incubated in blocking buffer diluted with primary antibodies for 1 h in a 37ଌ humidity chamber, then washed three times in 1× phosphate-buffered saline. Goat anti-rabbit antibodies conjugated with Fluor 555 diluted in blocking buffer were added to the slides. After incubation at 37ଌ for 1 h, the slides were washed three times in 1× phosphate-buffered saline. Finally, cells were counterstained with DAPI in antifade mounting medium (Vector Laboratories). The antibodies against ASY1, ZYP1, and γH2AX were prepared as described previously (Jing et al., 2019a). Antibodies against AFD1, RAD51, and DMC1 were gifts from collaborators. All primary and secondary antibodies were diluted at 1:100. Images of meiocytes were observed and captured using a Ci-S-FL microscope (Nikon) equipped with a DS-Qi2 microscopy camera (Nikon). Two-dimensional projected images were generated using NIS-Elements software. Further image processing was conducted using ImageJ software (https://imagej.nih.gov/ij/index.html).

Accession Numbers

Genes referenced in this article can be found in GenBank/National Center for Biotechnology Information data libraries under accession numbers Zm00001d014728 (ZmMTOPVIB) AT1G60460 (Arabidopsis MTOPVIB) GSBRNA2T00026842001 (Brassica napus MTOPVIB) GLYMA (Glycine max MTOPVIB _01G029900) LOC107872805 (Capsicum annuum MTOPVIB) LOC107787690 (Nicotana tabacum MTOPVIB) BRADI_Ig34717 (Brachypodium distachyon MTOPVIB) Os06g0708200 (O. sativa MTOPVIB) SETIT_008523mg (Setaria italica MTOPVIB) and SORBI_3010G257500 (Sorghum bicolor MTOPVIB).

Supplemental Data

The following supplemental materials are available.

Supplemental Figure S1. Phylogenetic analysis of MTOPVIB homologs in different plant species.

Supplemental Figure S2. Multiple sequence alignment analysis of MTOPVIB proteins in maize, Arabidopsis, and rice.

Supplemental Figure S3. Tissue-specific expression patterns of ZmMTOPVIB revealed by RT-qPCR.


Chapter 10 : meiosis

In prophase 1 of meiosis, the DNA coils tighter, and individual chromosomes first become visible under the light microscope as a matrix of fine threads. Because the DNA has already replicated before the onset of meiosis, each of these threads actually consist of two sister chromatids joined at their centromeres. In prophase 1, homologous chromosomes become closely associated in synapsis, exchange segments by crossing over, and then separate.

Prophase 1 is traditionally divided into five sequential stages: leptotene, zygotene, pachytene, diplotene, and diakinesis.

Leptotene: during which each chromosome becomes visible as two fine threads (chromatids)

Zygotene: A lattice of protein is laid down between the homologous chromosomes in the process of synapsis, forming a structure called a synaptonemal complex.

Pachytene: Pachytene begins when synapsis is complete (just after the synaptonemal complex forms and lasts for days. This complex, about 100 nm across, holds the two replicated chromosomes in precise register, keeping each gene directly across from its partner on the homologous chromosome. Within the synaptonemal complex, the DNA duplex unwind at certain sites, and single strands of DNA from base-pairs with complementary strands on the other homologue. The synaptonemal complex thus provides the structural framework that enables crossing over between the homologues chromosomes. As you will see, this has a key impact on how the homologues separate later in meiosis.

Diplotene: the fourth stage of the prophase I of meiosis, following pachytene, during which the paired chromosomes begin to seperate (the synaptonemal complex disassembles) into two pairs of chromatids . Diplotene is a period of intense cell growth. During this period the chromosomes decondense and become very active in transcription

Diakinesis: At the beginning of diakinesis, the transition into metaphase, transcription ceases and the chromosomes recondense.

Synapsis: During prophase, the ends of the chromatids attach to the nuclear envelope at specific sites. The sites the homologous attach to are adjacent, so that the members of each homologous pair of chromosomes are brought close together. They then line up side by side, apparently guided by heterochromatin sequences, in the process called synapsis.

Crossing Over

Within the synaptonemal complex, recombination is thought to be carried out during pachytene by very large protein assemblies called recombination nodules. A nodule’s diameter is about 90 nm, spanning the central element of the synaptonemal complex. The details of the crossing over process are not well understood, but involve a complex series of events in which DNA segments are exchanged between nonsister or sister chromatids. In humans, an average of two or three such crossover events occur per chromosome pair.

When crossing over is complete, the synaptonemal complex breaks down, and the homologous chromosomes are released from the nuclear envelope and begin to move away from each other. At this point, there are four chromatids for each other. At this point, there are four chromatids for each type of chromosome (two homologous chromosomes, each of which consists of two sister chromatids). The four chromatids do not separate completely, however, because they are held together in two ways: (1) the two sister chromatids of each homologue, recently created by DNA replication, are held near by their common centromeres and (2) the paired homologues are held together at the points where crossing over occurred within the synaptonemal complex.

Chiasma Formation

Evidence of crossing over can often be seen under the light microscope as an X-shaped structure known as a chiasma. The presence of a chiasma indicates that two chromatids (one from cach homologue) have exchanged parts. Like small rings moving down two strands of rope, the chiasmata move to the end of the chromosome arm as the homologous chromosomes separate.

Synapsis is the close pairing of homologous chromosomes that takes place early in prophase 1 of meiosis. Crossing over occurs between the paired DNA strands, creating the chromosomal configurations known as chiasmata. The two homologues are locked together by these exchanges and they do not disengage readily.

الطور 1

By metaphase 1, the second stage of meiosis 1, the nuclear envelope has dispersed and the microtubules form a spindle, just as in mitosis. During diakinesis of prophase 1, the chiasmata move down the paired chromosomes from their original points of crossing over, eventually reaching the ends of the chromosomes. At this point, they are called terminal chiasmata. Terminal chiasmata hold the homologous chromosomes together in metaphase 1, so that only one side of each centromere faces outward from the complex the other side is turned inward toward the other homologue. Consequently, spindle microtubules are able to attach to kinetochore proteins only on the outside of each centromere, and the centromeres of the two homologues attach to microtubules originating from opposite poles. This one-sided attachment is in marked contrast to the attachment in mitosis, when kinetochores on both sides of a centromere bind to microtubules.

Each joined pair of homologues then lines up on the metaphase plate. The orientation of each pair on the spindle axis is random: either the maternal or the paternal homologue may orient toward a given pole.

Chiasmata play an important role in aligning the chromosomes on the metaphase plate.

Completing Meiosis

After the long duration of prophase and metaphase, which together make up 90% or more of the time meiosis 1 takes, meiosis 1 rapidly concludes. Anaphase 1 and telophase 1 proceed quickly, followed – without an intervening period of DNA synthesis – by the second meiotic division.

In anaphase 1, the microtubules of the spindle fibers begin to shorten. As they shorten, they break the chiasmata and pull the centromeres toward the poles, dragging the chromosomes along with them. Because the microtubules are attached to kinetochores on only one side of each centromere, the individual centromeres are not pulled apart to form two daughter centromeres, as they are in mitosis. Instead, the entire centromere moves to one pole, taking both sister chromatids with it. When the spindle fibers have fully contracted, each pole has a complete haploid set of chromosomes consisting of one member of each homologous pair. Because of the random orientation of homologous chromosomes on the metaphase plate, a pole may receive either the maternal or the paternal homologue from each chromosome pair. As a result, the genes on different chromosomes assort independently that is, meiosis 1 result in the independent assortment of maternal and paternal chromosomes into the gametes.

Telophase 1

By the beginning of telophase 1, the chromosomes have segregated into two clusters, one at each pole of the cell. Now the nuclear membrane re-forms around each daughter nucleus. Because each chromosome within a daughter nucleus replicated before meiosis 1 began, each now contains two sister chromatids attached by a common centromere. Importantly, the sister chromatids are no longer identical, because of the crossing over that occurred in prophase 1. Cytokinesis may or may not occur after telophase 1. The second meiotic division, meiosis 2, occurs after an interval of variable length.

The Second Meiotic Division

After a typically brief interphase, in which no DNA synthesis occurs, the second meiotic division begins.

Meiosis 2 resembles a normal mitotic division. Prophase 2, metaphase 2, anaphase 2, and telophase 2 follow in quick succession.

Prophase 2 . At the two poles of the cell the clusters of chromosomes enter a brief prophase 2, each nuclear envelope breaking down as a new spindle forms.

Metaphase 2. In metaphase 2, spindle fibers bind to both sides of the centromeres.

Anaphase 2. The spindle fibers contract, splitting the centromeres and moving the sister chromatids to opposite poles.

Telophase 2. Finally, the nuclear envelope re-forms around the four sets of daughter chromosomes.

The final result of this division is four cells containing haploid sets of chromosomes. No two are alike, because of the crossing over in prophase 1. Nuclear envelopes then form around each haploid set of chromosomes. The cells that contain these haploid nuclei may develop directly into gametes, as they do in animals. Alternatively, they may themselves divide mitotically, as they do in plants, fungi, and many protists, eventually producing greater numbers of gametes or, as in the case of some plants and insects, adult individuals of varying ploidy.

During meiosis 1, homologous chromosomes move toward opposite poles in anaphase 1, and individual chromosomes cluster at the two poles in telophase 1. At the end of meiosis 2, each of the four haploid calls contains one copy of every chromosome in the set, rather than two. Because of crossing over, no two cells are the same. These haploid cells may develop directly into gametes, as in animals, or they may divide by mitosis, as in plants, fungi, and many protists.


Sorting out meiosis

Funding support by the Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC).

In his elegant and authoritative volume of work الانقسام الاختزالي, Bernard John aptly quoted the late J. Herbert Taylor, best known for his metabolic labeling studies on nucleic acid synthesis and segregation during the 1950s “Meiosis is still a potential battleground where dead hypotheses litter the field or rest uneasily in shallow graves, ready to emerge and haunt any conscientious scientist who tries to consolidate victory for any particular thesis” 1 . Even today with our ability to bring the combined power of genomics, transcriptomics, proteomics, and systems biology to bear on the problem much of the process of meiosis in mammals remains mysterious and incompletely characterized.

Meiosis is a segment of gametogenesis, the developmental program by which diploid progenitor germ cells reduce their ploidy through meiotic divisions to form haploid gametes that undergo profound genomic and morphological differentiation. The gametes, sperm, and ova in humans, are essential for sexual reproduction. Defects in this differentiation program manifest in phenotypes ranging from infertility and increased incidence of birth defects to cancers 2, 3 . Despite the importance of this process it remains less well understood than the process of mitotic cell division. Many aspects of gametogenesis remain unclear in part owing to our limited ability thus far to completely recapitulate the process in vitro. Unlike most basic processes involved in cell proliferation, gametogenesis only proceeds effectively in vivo with the support of surrounding cells and structures and bathed in the appropriate milieu of hormones and growth factors 4 . Attempts to recapitulate gametogenesis in vitro are making headway but to date neither spermatogenesis nor oogenesis with human germ cells has been fully accomplished in vitro 5, 6 .

The inability to reproduce the complete process of gamete formation in vitro should not preclude analysis of its stages, all that is required is the ability to recover a population of cells undergoing gametogenesis and separate them based on the phase of development. This is the approach that has been taken previously where isolated meiocytes were separated by sedimentation through a bovine serum albumin (BSA) gradient 7 . Although this technique has been successful in isolating populations of prophase, pachytene, and diplotene cells, it is limited by the inability to separate cells in the early stages of prophase I. The problem here is that the leptotene and zygotene phase is relatively short and cells pass through these stages quickly so in comparison with pachytene cells and spermatocytes, cells in the leptotene and zygotene phase are in very low abundance 8 . This limitation is compounded by the fact that cells in the leptotene and zygotene phase have similar physical characteristics (size, volume, and DNA content) and hence it is difficult to separate them based on any of those physical parameters 9 . This is problematic because prophase I is arguably the most important phase of meiosis.

During prophase I the chromosomes that were replicated in the preceding interphase begin to align in leptotene, the chromosomal telomeres cluster and interact with the nuclear envelope, promoting localized movement of the chromosomes to aid in the homology search required for bivalent formation that will occur as the cells enter the zygotene stage 10 . The homology search that allows alignment is an essential precursor to the formation of DNA double strand breaks and meiotic recombination along with formation of the synaptonemal complex and chiasmata. These events are crucial to ensure the integrity of the chromosome divisions that follow. Defects in chromosome alignment, recombination, even reduced levels of recombination can lead to increased rates of nondisjunction at meiosis I resulting in aneuploidy that manifests as reduced fertility or birth defects 2 . Indeed there is some evidence that such aneuploidy can result in cancer.

Progression through prophase I is accompanied by changes in gene expression, chromatin modification state, and chromatin condensation. These changes help to drive progress into meiosis. A comprehensive understanding of these processes in mammalian cells requires the application of genomic and proteomic technologies but these procedures are dependent upon the ability to isolate cell populations enriched for cells in the various stages of meiotic prophase.

In this issue of Cytometry (page 556), Gaysinskaya et al. describe a procedure for the recovery of germ cells from male adult mice and a fluorescence activated cell sorting strategy that effectively separates cells in all the phases of gametogenesis allowing recovery of populations with high purity. It is particularly notable that these investigators have optimized the preparation, staining, and analysis of the cells to allow separation of leptotene and zygotene populations. Sorting methods have been previously described for the separation of meiocytes and have been applied to guinea pigs which have a higher percentage of early prophase I cells and to adult mice 9, 11 , but no previously published protocols have achieved the same degree of separation of leptotene and zygotene stage cells as the protocol presented by Gaysinskaya et al. (page 556). The success of the newly described technique is built on three new approaches to the problem first a more extensive treatment of the seminal vesicles to increase the recovery of meiocytes, second, the use of Hoechst 33342 staining, and third, the application of a series of back-gating procedures to allow clear separation of individual populations of meiotic cells.

The isolation and preparation method used by the authors is similar to the methods used by other investigators but the details can make a big difference. Tissue from mouse testis was treated with collagenase/DNase solution followed by pipetting to disperse the seminiferous tubules and release interstitial cells. This was followed by a further, more rigorous treatment with collagenase/DNase and trypsin to dissociate the tissue and release single cells. The authors specify the times of treatment and concentration of enzymes used, which they titrated to achieve optimal cell preparations. The sample preparation is a critical step in this procedure because early prophase cells are in very low abundance and to isolate sufficient cells for sorting and downstream analysis requires near quantitative recovery from the tissue.

The second critical aspect of the cell preparation for sorting is staining with Hoechst 33342. This nucleic acid binding stain does not require permeablization of the cells and importantly allows the cell preparation to be subsequently stained with propidium iodide to rapidly exclude dead cells from the sort. Although other investigators have used Hoechst for sorting meiotic cells 12 , Gaysinskaya et al. specify that optimal staining is achieved with 6 µg Hoechst/million cells (page 556). The authors indicate that the ratio of stain to cells is critical to achieve good results and provides reproducibility thus allowing for populations from independent preparations to be pooled. This is an important consideration not only to allow reproducibility between experiments but also because collecting sufficient samples for RNA or proteomic analysis from low abundance populations like leptotene cells may require pooling samples from more than one sort.

Flow cytometric analysis of the prepared meiotic cells was initiated with conditions to exclude debris based on setting a size gate with the forward scatter. Although this eliminates much of the debris in the sample preparation, it also has the effect of gating out the abundant small-elongated spermatozoa. This gating reduced the ability to capture and analyze all of the meiotic cell types in a single experiment. However, it significantly reduces the noise in later analysis and the trade off is worthwhile as the elongated spermatozoa population can be examined independently if it is important to collect them for any particular analysis.

One of the benefits of Hoechst 33342 staining is the ability to detect the stain in either the red or blue channel. The authors took advantage of this property by setting a gate on the blue channel based on DNA content to allow exclusion of haploid cells that have completed the meiotic program. This treatment further simplifies the pattern of meiotic cells detected and in the authors hands this allows striking discrimination between leptotene/zygotene and pachytene/diplotene populations however, it is not possible to separate cells in the leptotene and zygotene phases at this point in the analysis. To isolate a high purity population of early prophase cells a back-gating strategy was applied. This strategy bases its initial gating on the fluorescence characteristics of the cells followed by analysis of the physical (forward scatter (FSC) and side scatter (SSC)) characteristics. The authors initially gated leptotene and zygotene cells based on Hoechst 33342 fluorescence but FSC and SSC plots revealed a large degree of overlap in the two populations resulting in extensive contamination. This is not surprising given the similar shape and diameter of cells in the leptotene and zygotene stages. This information allowed the authors to impose more conservative gates on the FSC and SSC profiles to reduce contamination of the populations based on light scattering parameters. This strategy thus creates gates based on both Hoechst 33342 dye fluorescence and FSC/SSC that allows separation of even the leptotene and zygotene populations.

Application of the back-gating approach to murine cells in all stages of spermatogenesis allowed the isolation of high purity populations of cells. Immuno-staining with antibodies directed at phosphorylated histone γH2AX a marker for DNA double strand breaks, and SYCP3, a marker for the synaptonemal complex, as well as simply staining the DNA of chromosome spreads showed that multiple sorts allowed the collection of preleptotene, and pachytene cell populations of 80–90% purity and diplotene cells of greater than 95% purity. Most importantly for this article leptotene cells with purity of up to 85%, and zygotene cell populations of up to 90% purity could be captured. Although not perfect such populations will undoubtedly be sufficient for transcriptomic and proteomic analysis, and this will be an important technique to apply to studies of gametogenesis. This tool will greatly enhance our ability to investigate the transcriptional program and proteomic dynamics that regulate progression through gametogenesis in mammalian cells.


شاهد الفيديو: ما هو الحمض النووي DNA وكيف يعمل شرح بسيط وعلمي (ديسمبر 2022).