
We are searching data for your request:
Upon completion, a link will appear to access the found materials.
أ.مقدمة عن تلطيخ
نقاش
في مختبرنا ، يمكن فحص مورفولوجيا البكتيريا (الشكل والهيكل) بطريقتين:
- من خلال مراقبة الكائنات الحية غير الملوثة (الجبل الرطب) ، أو
- من خلال مراقبة الكائنات الحية الملطخة المقتولة.
نظرًا لأن البكتيريا عديمة اللون تقريبًا وبالتالي تظهر تباينًا ضئيلًا مع المرق الذي تم تعليقها فيه ، فمن الصعب ملاحظتها عندما لا تكون ملطخة. يمكن تلطيخ الكائنات الحية الدقيقة واحدًا من:
- رؤية تباين أكبر بين الكائن الحي والخلفية ،
- التفريق بين الأنواع المورفولوجية المختلفة (حسب الشكل والترتيب ورد فعل الجرام وما إلى ذلك) ،
- مراقبة هياكل معينة (سوط ، كبسولات ، إندوسبورات ، إلخ).
قبل تلطيخ البكتيريا ، يجب أن تفهم أولاً كيفية ذلك "إصلاح" الكائنات الحية على الشريحة الزجاجية. إذا لم يتم إصلاح المستحضر ، فسيتم غسل الكائنات الحية من الشريحة أثناء التلوين. طريقة بسيطة هي طريقة التجفيف بالهواء وتثبيت الحرارة. يتم تثبيت حرارة الكائنات الحية عن طريق تمرير مسحة مجففة بالهواء من الكائنات الحية من خلال لهب موقد غاز أو تثبيته أمام فتحة مبخرة دقيقة. تخثر الحرارة بروتينات الكائنات الحية مما يتسبب في التصاق البكتيريا بالشريحة.
ال إجراء التثبيت الحراري على النحو التالي:
1. إذا كانت الثقافة مأخوذة من وسط أجار:
أ. استخدام زجاجة قطارة الماء منزوع الأيونات الموجود في رف التلوين، مكان 1/2 قطرة ماء بالحجم الطبيعي على شريحة نظيفة عن طريق لمس القطارة للشريحة (انظر الشكل 2). عادة ، استخدم حلقة التلقيح المعقمة لوضع قطرة من الماء منزوع الأيونات على الشريحة.
ب. باستخدام حلقة التلقيح المعقمة الخاصة بك ، قم بإزالة a كمية صغيرة من الثقافة من سطح أجار و المسه برفق 2-3 مرات إلى قطرة الماء حتى الماء غائم بشكل واضح (انظر الشكل 3).
ج. حرق البكتيريا المتبقية على حلقة التلقيح. إذا تمت إضافة الكثير من الثقافة إلى الماء ، فلن ترى بكتيريا ملطخة.
د. بعد أن تبرد حلقة التلقيح ، نشر التعليق على ما يقرب من نصف الشريحة لتشكيل غشاء رقيق (انظر الشكل 4).
ه. السماح لهذا التعليق الرقيق الهواء جاف تمامًا (انظر الشكل 5). يجب أن تجف اللطاخة تمامًا قبل تثبيت الشريحة!
F. لإصلاح حرارة البكتيريا على الشريحة ، التقط الشريحة المجففة بالهواء باستخدام ملقط الغطاء وأمسك الجزء السفلي من الشريحة المقابلة للمسحة بالقرب من فتحة المبخرة لمدة 10 ثوانٍ (انظر الشكل 6) كما أوضح معلمك. إذا لم يتم تسخين الشريحة بشكل كافٍ ، فسيتم غسل كل البكتيريا. في حالة ارتفاع درجة حرارتها ، يمكن أن تتلف السلامة الهيكلية للبكتيريا.
2. إذا تم أخذ الكائن الحي من أ ثقافة المرق:
أ. باستخدام شربي ، ارسم دائرة حول حجم النيكل على ال قاع شريحة المجهر الخاص بك (انظر الشكل 10)
ب. اقلب الشريحة. باستخدام حلقة التلقيح المعقمة ، ضع 2 أو 3 حلقات من المزرعة بطريقة معقمة داخل هذه الدائرة على أعلى من الشريحة (انظر الشكل 11). لا تستخدم الماء.
ج. باستخدام حلقة التلقيح ، انشر التعليق فوق المنطقة التي تحددها الدائرة لتشكيل غشاء رقيق.
د. السماح لهذا التعليق الرقيق الهواء جاف تمامًا.
ه- لإصلاح حرارة البكتيريا على الشريحة ، التقط الشريحة المجففة بالهواء باستخدام ملقط الغطاء وأمسك الجزء السفلي من الشريحة المقابلة للمسحة بالقرب من فتحة المبخرة لمدة 10 ثوانٍ (انظر الشكل: إذا ارتفعت درجة حرارتها بشكل مفرط ، يمكن أن تتضرر السلامة الهيكلية للبكتيريا.
لفهم كيفية عمل التلوين ، سيكون من المفيد معرفة القليل عن الطبيعة الفيزيائية والكيميائية للبقع. وعادة ما تكون البقع عبارة عن أملاح يكون فيها أحد الأيونات ملونًا. (الملح هو مركب يتكون من أيون موجب الشحنة وأيون سالب الشحنة.) على سبيل المثال ، صبغة الميثيلين الأزرق هي في الواقع ملح ميثيلين أزرق كلوريد والذي سينفصل في الماء إلى أيون ميثيلين أزرق موجب الشحنة وهو أزرق اللون وأيون الكلوريد سالب الشحنة وهو عديم اللون.
يمكن تقسيم الأصباغ أو البقع إلى مجموعتين: قاعدية وحمضية. إذا كان جزء اللون من الصبغة موجودًا في أيون موجب، كما في الحالة المذكورة أعلاه ، يطلق عليه اسم أ صبغة أساسية (أمثلة: الميثيلين الأزرق ، البنفسجي الكريستالي ، السافرانين). إذا كان جزء اللون في ملف أيون سالب الشحنة، يطلق عليه صبغة حمضية (أمثلة: نيجروزين ، أحمر الكونغو).
البقع الأساسية | وقت التعرض لتلطيخ البكتيريا |
---|---|
الميثيلين الأزرق | 1-2 دقيقة |
الكريستال البنفسجي | 20-60 ثانية |
كاربول فوشين | 15-30 ثانية |
سفرانين | 30-60 ثانية |
مبدأ
يعتمد مبدأها على إنتاج ملف ملحوظ التباين بين ال الكائن الحي والمناطق المحيطة بها باستخدام صبغة أساسية. تتكون الصبغة الأساسية من حامل صبغ إيجابي ، والذي يجذب بقوة مكونات الخلية السالبة والجزيئات المشحونة مثل الأحماض النووية والبروتينات. وبالتالي ، ينتج عن تقنية التلوين البسيطة خلية بكتيرية ملونة على خلفية عديمة اللون.
إجراء تلطيخ بسيط
يتضمن الخطوات الثلاث التالية:
تحضير المسحة
تظهر اللطاخة البكتيرية كغشاء رقيق من الثقافة البكتيرية. لإعداد اللطاخة ، نحتاج إلى تنفيذ الخطوات التالية:
- خذ شريحة زجاجية نظيفة وخالية من الشحوم.
- أضف قطرة من الماء المقطر في وسط الشريحة الزجاجية.
- بعد ذلك ، أضف لقاحًا من الثقافة البكتيرية بحلقة تلقيح معقمة على الشريحة الزجاجية.
- بعد ذلك ، قم بخلط اللقاح مع قطرة من الماء المقطر لعمل غشاء رقيق عن طريق تدوير حلقة التلقيح بشكل موحد حتى تكوين طبقة بكتيرية رقيقة.
تحديد الحرارة
بعد تحضير اللطاخة ، حرك الشرائح المعدة فوق موقد بنسن & # 8217 s لثلاث مرات على الأقل. ثم اترك الشريحة تجف في الهواء. هناك العديد من الأسباب لإجراء التثبيت الحراري ولا يمكن تخطيها للأسباب التالية:
- يساعد التثبيت الحراري في تثبيت عينة على الشريحة الزجاجية.
- يساعد التثبيت الحراري البقعة على اختراق المسحة.
تلطيخ البكتيريا
إنها الخطوة الأخيرة والأكثر أهمية ، والتي يمكن من خلالها تحديد الخصائص المورفولوجية للبكتيريا من خلال الفحص المجهري ، بمجرد تلطيخ الخلايا. تتضمن هذه المرحلة الخطوات التالية وهي كالتالي:
- أضف البقعة إلى مسحة الحرارة الثابتة.
- اسمح للبقعة بالوقوف لمدة دقيقة واحدة على الأقل حتى تتمكن من اختراق الخلايا.
- اغسل الشريحة الزجاجية بعناية.
- جفف الشريحة بالورق الماص (لا تمسح الشريحة).
- افحص الشريحة الزجاجية تحت المجهر من طاقة منخفضة إلى عالية للحصول على عرض مكبرة للعينة. يمكن للمرء أيضًا إضافة قطرة من الغمر بالزيت فوق الشريحة الزجاجية والمنطقة الملطخة # 8217s لملاحظتها تحت هدف 100X.
فيديو
مزايا
- تلطيخ بسيط جدا بسيط طريقة الأداء ، والتي تلطخ الكائن الحي باستخدام كاشف واحد.
- إنها سريعون طريقة تقلل من وقت الأداء بأخذ 3-5 دقائق فقط.
- يساعد التلوين البسيط في فحص أو توضيح الشكل والحجم والترتيب البكتيري.
- كما أنه يساعدنا على التفريق بين الخلايا البكتيرية والبنى غير الحية.
- يمكن أن يكون التلوين البسيط مفيدًا في دراسة أولية للبكتيريا & # 8217s الخصائص المورفولوجية.
سلبيات
- لا يعطي الكثير من المعلومات حول الخلية بصرف النظر عن الخصائص المورفولوجية للبكتيريا.
- من خلال التلوين البسيط ، لا يمكننا تصنيف نوع معين من الكائنات الحية.
استنتاج
لذلك ، يمكننا أن نستنتج أن طريقة التلوين البسيطة هي أسهل طريقة لتلوين الكائن المجهري لأنه يستخدم صبغة أساسية واحدة. تعتمد نتائج التلوين البسيط على نوع البقعة الأساسية التي تم استخدامها.
سيحدد لون البقعة لون العينة التي يجب تحديدها. على سبيل المثال ، عندما تحتفظ البكتيريا بلون الزعفران ، فإنها تظهر باللون الوردي المائل إلى الأحمر ، وينطبق الشيء نفسه على البقع الأخرى.
هناك تجاذب بين البقعة الإيجابية والخلية البكتيرية السلبية في التلوين البسيط ، مما ينتج عنه ملاحظة البكتيريا الملونة مع خلفية مشرقة.
ملاحظات على البكتيريا الحية
في بعض الأحيان يتم اختراق نتائج الفحص لأن الكائن الملوث ينمو في الوسط بدلاً من العزلة البكتيرية المقصودة. لإجراء فحص سريع للتحقق من أن مورفولوجيا الخلية متوافقة مع الثقافة التي تم أخذ اللقاح منها ، يمكن تحضير حامل مبلل وفحصه في الحقل المظلم و / أو تباين الطور. في حالة وجود الأبواغ الداخلية غالبًا ما تكون واضحة في تباين الطور ، مما يسمح للمرء بتجنب الاضطرار إلى عمل بقعة بوغ.
في كثير من الأحيان ، يتطلب التعرف على كائن حي غير معروف معرفة حركته ، أي قدرته على الحركة متعدية. قد يكون من الصعب تفسير نتائج حضانات أجار الحركية ، جزئيًا للبكتيريا الهوائية التي لا تنمو جيدًا في الأجار. الفحص السريع الجيد للحركة هو فحص ثقافة صغيرة جدًا باستخدام طريقة الإسقاط المعلق. ستكون الثقافة الشابة عبارة عن مزرعة مرق تم تلقيحها في الليلة السابقة ، أو ثقافة مرق تم تخفيفها 10 أضعاف أو نحو ذلك في الصباح ، وحضنتها ، وفحصها بعد الظهر. يتم تحضير ثقافة الإسقاط المعلق عن طريق وضع قطرة صغيرة جدًا من الوسط على ساترة ، ثم عكس الغطاء فوق شريحة منخفضة بحيث لا يتصل الجزء السفلي من القطرة بالشريحة نفسها. يمكن استخدام الفازلين إذا لزم الأمر لعمل حجرة محكمة الغلق.
يمكن فحص القطرات المعلقة باستخدام جميع العدسات الموضوعية ، على الرغم من القدرة على النظر في عمق الهبوط ، قد يكون الحد الأقصى 100x. ستعمل شريحة الاكتئاب المنحنية على تشويه تأثيرات تباين الطور ، لكن الحقل المظلم قد يعمل وسيكون كافياً لاكتشاف الحركة. تتحرك جميع البكتيريا الحية بواسطة الحركة البراونية (الجزيئية) ، بمعدل اهتزاز يتناسب عكسياً مع حجم الخلية. الحركة البراونية السريعة هي خاصية شائعة للمكورات غير المتحركة مثل المكورات العنقودية أو العقدية أو المكورات الدقيقة. ومع ذلك ، يتم جلد بعض البكتيريا ، وتظهر حركة انتقالية أيضًا. ستنتقل الكائنات الحية المتحركة حقًا عبر مجال المجهر. ابحث عن حركة اتجاهية محددة ، وهبوط ، وحركة ضد التيارات.
إجراء
- الحصول على تعليق موحد للخلايا: اتبع بروتوكول تحييد الكتابة / التربسين لنوع الخلية المحدد. ضع تعليق الخلية في أنبوب طرد مركزي مخروطي بحجم مناسب. للحصول على تعداد دقيق للخلايا ، من الضروري وجود تعليق موحد يحتوي على خلايا مفردة. ماصة تعليق الخلية لأعلى ولأسفل في الأنبوب 5-7 مرات باستخدام ماصة مع تجويف صغير (5 مل أو 10 مل ماصة). بالنسبة للخلايا التي تم إذابتها من الحفظ بالتبريد (في وسط 1 مل من الحفظ بالتبريد) ، استخدم الماصة لأعلى ولأسفل 7-10 مرات باستخدام ماصة مل واحدة.
لتحديد دقيق ، يجب أن يكون العدد الإجمالي للخلايا التي تعلو 1 مم 2 بين 15 و 50. إذا كان عدد الخلايا لكل 1 مم 2 يتجاوز 50 ، خفف العينة وعد مرة أخرى. إذا كان عدد الخلايا لكل 1 مم 2 أقل من 15 ، فاستخدم عينة أقل تمييعًا. في حالة عدم توفر عينات أقل تمييعًا ، قم بحساب الخلايا على جانبي مقياس الهيموسيتومتر (مناطق 8 × 1 مم 2).
احتفظ بعدد منفصل من الخلايا القابلة للحياة وغير القابلة للحياة. إذا كانت أكثر من 25٪ من الخلايا غير قابلة للحياة ، فلن يتم الحفاظ على الثقافة على الكمية المناسبة من الوسائط. أعد احتضان الثقافة وضبط حجم الوسائط وفقًا لالتقاء الخلايا وظهور الوسائط. قم بتضمين الخلايا في الأعلى واليسار التي تلامس الخط الأوسط. لا يتم حساب الخلايا التي تلامس الخط الأوسط في الأسفل واليمين.
أنا. التريبان الأزرق هو "البقعة الحيوية" المستبعدة من الخلايا الحية.
ثانيا. تظهر الخلايا الحية عديمة اللون ومشرقة (قابلة للانكسار) في ظل تباين الطور.
ثالثا. تلطخ الخلايا الميتة باللون الأزرق وهي غير قابلة للكسر.
- النسبة المئوية لجدوى الخلية = [إجمالي الخلايا القابلة للحياة (غير الملطخة) / إجمالي الخلايا (القابلة للحياة + الميتة)] × 100.
- خلايا قابلة للحياة / مل = متوسط عدد الخلايا القابلة للحياة لكل مربع × عامل التخفيف × 10 4 /
- متوسط عدد الخلايا القابلة للحياة لكل مربع = إجمالي عدد الخلايا القابلة للحياة في 4 مربعات / 4.
- عامل التخفيف = الحجم الإجمالي (حجم العينة + حجم السائل المخفف) / حجم العينة.
- إجمالي الخلايا / العينة القابلة للحياة = الخلايا القابلة للحياة / مل × الحجم الأصلي للسائل الذي تمت إزالة عينة الخلية منه.
- حجم الوسائط المطلوبة = (عدد الخلايا المطلوبة / إجمالي عدد الخلايا القابلة للحياة) × 1000.
طرق الكيمياء المناعية
تستخدم الطريقة الأنزيمية للكيمياء المناعية الكواشف مثل كلوريد الكالسيوم وهيدروكسيد الصوديوم ومحاليل حمض الهيدروكلوريك وزيلين لإزالة الشمع والميثانول. تستخدم الكيمياء الهيستولوجية المناعية إجراءات تلطيخ مختلفة مثل الطريقة المباشرة بخطوة واحدة ، وطرق ABC ، والطريقة غير المباشرة المكونة من خطوتين ، وتضخيم إشارة Tyramide.
طريقة مباشرة
الطريقة المباشرة هي طريقة تلطيخ خطوة واحدة ، وتتضمن جسمًا مضادًا مرتبطًا (أي مصل FITC مترافق) يتفاعل مباشرة مع مولد الضد في أقسام الأنسجة. تستخدم هذه التقنية جسمًا مضادًا واحدًا فقط ويكون الإجراء قصيرًا وسريعًا. ومع ذلك ، فهو غير حساس بسبب تضخيم الإشارة القليل ونادرًا ما يستخدم منذ إدخال الطريقة غير المباشرة.
الطريقة غير المباشرة
تتضمن الطريقة غير المباشرة جسمًا مضادًا أوليًا غير مسمى (الطبقة الأولى) والذي يتفاعل مع مستضد الأنسجة ، ويتفاعل الجسم المضاد الثانوي المسمى (الطبقة الثانية) مع الجسم المضاد الأولي (ملاحظة: يجب أن يكون الجسم المضاد الثانوي ضد IgG للأنواع الحيوانية التي يكون فيها الجسم المضاد الأولي ظهرت). هذه الطريقة أكثر حساسية بسبب تضخيم الإشارة من خلال العديد من تفاعلات الأجسام المضادة الثانوية مع مواقع مستضدية مختلفة على الجسم المضاد الأولي. بالإضافة إلى ذلك ، يعد هذا أيضًا اقتصاديًا نظرًا لأنه يمكن استخدام جسم مضاد من الطبقة الثانية مع العديد من الأجسام المضادة للطبقة الأولى (التي يتم رفعها من نفس النوع الحيواني) إلى مستضدات مختلفة. يمكن تمييز الجسم المضاد من الطبقة الثانية بصبغة فلورية مثل FITC أو رودامين أو أحمر تكساس ، وهذا ما يسمى طريقة التألق المناعي غير المباشر. يمكن تمييز الجسم المضاد من الطبقة الثانية بإنزيم مثل البيروكسيديز أو الفوسفاتاز القلوي أو الجلوكوز أوكسيديز ، وهذا ما يسمى طريقة الإنزيم المناعي غير المباشر.
طريقة PAP
(طريقة البيروكسيديز المضادة للبيروكسيديز): طريقة PAP هي تطوير إضافي للتقنية غير المباشرة وتتضمن طبقة ثالثة هي الجسم المضاد للأرنب للبيروكسيداز ، مقترنًا بالبيروكسيداز لصنع مركب مستقر جدًا من البيروكسيداز المضاد للبيروكسيديز. المركب ، المكون من الأرانب gaba-globulin و peroxidase ، يعمل كمستضد من الطبقة الثالثة ويصبح مرتبطًا بالماعز غير المقترن المضاد للأرنب gaba-globulin للطبقة الثانية. تكون الحساسية أعلى بحوالي 100 إلى 1000 مرة نظرًا لأن جزيء البيروكسيديز غير مقترن كيميائيًا بمضاد IgG ولكنه مرتبط مناعيًا ، ولا يفقد أيًا من نشاط إنزيمه. كما أنه يسمح بتخفيف أعلى بكثير من الجسم المضاد الأولي ، وبالتالي القضاء على العديد من الأجسام المضادة غير المرغوب فيها وتقليل تلطيخ الخلفية غير المحدد.
طريقة مجمع Avidin-Biotin (ABC)
طريقة ABC هي طريقة IHC القياسية وواحدة من التقنيات المستخدمة على نطاق واسع للتلوين المناعي الكيميائي. يمكن وصف Avidin ، وهو بروتين سكري كبير ، بالبيروكسيديز أو الفلورسين وله صلة عالية جدًا بالبيوتين. يمكن ربط البيوتين ، وهو فيتامين منخفض الوزن الجزيئي ، بمجموعة متنوعة من الجزيئات البيولوجية مثل الأجسام المضادة. تتضمن التقنية ثلاث طبقات. الطبقة الأولى هي جسم مضاد أولي غير مسمى. الطبقة الثانية عبارة عن جسم مضاد ثانوي معالج بالبيوتينيل. الطبقة الثالثة عبارة عن مركب من أفيدين-بيوتين بيروكسيداز. يتم بعد ذلك تطوير البيروكسيداز بواسطة DAB أو ركيزة أخرى لإنتاج منتجات نهائية مختلفة للقياس اللوني.
طريقة StreptAvidin Biotin (LSAB) المسمى
الستربتافيدين ، المشتق من المكورات العقدية أفيديني ، هو ابتكار حديث لاستبدال أفيدين. جزيء الستربتافيدين غير مشحون بالنسبة للأنسجة الحيوانية ، على عكس أفيدين الذي له نقطة تساوي كهربية قدرها 10 ، وبالتالي يتم التخلص من الارتباط الكهروستاتيكي بالأنسجة. بالإضافة إلى ذلك ، لا يحتوي الستربتافيدين على مجموعات كربوهيدراتية قد ترتبط بكتينات الأنسجة ، مما يؤدي إلى بعض تلطيخ الخلفية. LSAB تشبه تقنيًا طريقة ABC القياسية. الطبقة الأولى هي جسم مضاد أولي غير مسمى. الطبقة الثانية عبارة عن جسم مضاد ثانوي معالج بالبيوتينيل. الطبقة الثالثة هي اتحادات إنزيم-ستربتافيدين (HRP-Streptavidin أو AP-Streptavidin) لتحل محل مجمع أفيدين-بيوتين بيروكسيديز. ثم يتم تصور الإنزيم من خلال تطبيق حلول الكروموجين الركيزة لإنتاج منتجات نهائية مختلفة لونية. يمكن أيضًا أن تكون الطبقة الثالثة عبارة عن صبغة فلورية - ستربتافيدين مثل FITC-Streptavidin إذا كان وضع العلامات الفلورية مفضلًا. يشير تقرير حديث إلى أن طريقة LSAB أكثر حساسية بحوالي 5 إلى 10 مرات من طريقة ABC القياسية.
إرشادات للتلوين غير المباشر في قياس التدفق الخلوي باستخدام كواشف الكشف الثانوية
التين. 2. تلطيخ استراتيجيات. رسم توضيحي للأنواع المختلفة من بروتوكولات التلوين التي قد تحتاج إلى استخدامها للحصول على تلطيخ ناجح غير مباشر ومباشر في قياس التدفق الخلوي.
1. بسيط تلطيخ الأجسام المضادة الأولية
عند تلطيخ العينات بجسم مضاد أولي مترافق مباشرة ، بعد الحضانة الأولية ويغسل بضع بسيطة ، تكون العينة جاهزة للحصول عليها (الشكل 2 أ). التلوين غير المباشر باستخدام جسم مضاد أولي غير مقترن ، تم اكتشافه بجسم مضاد ثانوي ، يتضمن خطوات إضافية: احتضان الجسم المضاد الأساسي ، واغسله ، ثم احتضنه بالجسم المضاد الثانوي المسمى الفلورسنت الذي يتعرف على الجسم المضاد الأساسي. بعد المزيد من عمليات الغسيل ، تكون العينة جاهزة للحصول عليها (الشكل 2 ب).
ومع ذلك ، إذا كان لديك مجموعة من الأجسام المضادة الأولية المقترنة وغير المقترنة ، والتي تتطلب أجسامًا مضادة ثانوية في لوحتك ، فقد يكون التلوين أكثر تعقيدًا. لتجنب الارتباط غير المحدد ، هناك بروتوكولات تلطيخ ، وخطوات للحظر والغسيل ، وخيارات للأجسام المضادة يجب مراعاتها بالإضافة إلى ضوابط قياس التدفق الخلوي المعتادة.
2. الجمع بين الأجسام المضادة المقترنة وغير المقترنة
المشكلة الشائعة عند الجمع بين الأجسام المضادة غير المقترنة والمترافقة هي الاكتشاف غير المناسب للأجسام المضادة الأولية المترافقة / الأجسام المضادة بواسطة الجسم المضاد الثانوي ، مما يؤدي إلى نتائج إيجابية خاطئة. تم توضيح هذه المشكلة في مقطع فيديو يوضح عمليًا كيف يمكن أن يؤدي استخدام الأجسام المضادة الثانوية المحددة من نوع IgG الفأري Bio-Rad & rsquos إلى تحقيق نتائج يمكنك الوثوق بها في التصوير المتعدد ، دون التعرض لخطر الإيجابيات الخاطئة ، وفي خطوتين بسيطتين فقط. لتجنب هذه المشكلة ، من الضروري أن تكون قادرًا على التمييز بين الأجسام المضادة الأولية غير المقترنة والمترافقة عن طريق الأنواع أو الفئة أو النمط المتماثل. يمكن تحضين الأجسام المضادة الأولية معًا وغسلها ومن ثم تصنيفها بأجسام مضادة ثانوية ، والتي تكتشف فقط الأنواع أو الفئة أو النمط المتماثل للأجسام المضادة الأولية غير المقترنة (الشكل 2 ج). لتحسين تلطيخك ، من الناحية المثالية ، يجب معايرة كل من الأجسام المضادة الأولية والثانوية لضمان الحد الأدنى من الخلفية مع إشارة محددة قصوى. يوصى أيضًا بتضمين عنصر تحكم ثانوي خاص بالأجسام المضادة فقط وعنصر تحكم يحتوي على جميع الأجسام المضادة باستثناء الجسم المضاد الأولي غير المُسمى للتحقق من وجود تلطيخ غير محدد. للحصول على مساعدة في تلطيخك ، استعرض بروتوكولات التلوين التفصيلية الخاصة بنا.
3. الحجب والغسيل
يمكن للحضانة بمصل مناسب ، قبل إضافة الأجسام المضادة الأولية ، تقليل الخلفية عن طريق منع مستقبلات Fc. يجب أن يكون هذا من نفس النوع مثل نوع الخلية الذي يتم تحليله ، وليس من نفس النوع مثل مضيف الجسم المضاد الأولي ، حيث سيتعرف الجسم المضاد الثانوي على المصل المعطل والجسم المضاد الأساسي. إذا كنت تستخدم ألبومين المصل البقري ، فقد يكون ملوثًا بـ IgG البقري الذي يمكن أن يتفاعل مع الأنواع وثيقة الصلة مثل الماعز والأغنام. قم بتضمين خطوات غسيل كافية لإزالة الأجسام المضادة الأولية والثانوية الزائدة. قد تتطلب بروتوكولات التلوين داخل الخلايا خطوات غسيل أطول وأطول لإزالة كل الأجسام المضادة الزائدة. علاوة على ذلك ، قد يؤثر اختيار النفاذية ومخزن الغسيل على تلطيخ ويجب تحسينه لتجربتك.
4. اختيار الجسم المضاد
سيؤثر اختيار الجسم المضاد للأجسام المضادة الأولية والثانوية على تصميمك التجريبي. يمكن إزالة التفاعل التبادلي للأنواع غير المرغوب فيها باستخدام أجسام مضادة ثانوية مُمتزة متصالبة أو أجسام مضادة خاصة بالنمط المتماثل. سيضمن هذا أن الإشارة من الجسم المضاد الثانوي خاصة بالهدف الأساسي. إذا كنت تلطخ الأنسجة المناعية ، التي تحتوي على الكثير من مستقبلات Fc ، فقد ترغب في اعتبار جزء F (ab) كجسم مضاد ثانوي بالإضافة إلى حجبه بالمصل لتقليل الارتباط غير المحدد. عند تعدد الإرسال ، في حالة عدم وجود أجسام مضادة أولية مرفوعة في أنواع مختلفة ، قد تتوفر فئات مختلفة من الغلوبولين المناعي ، على سبيل المثال IgG و IgM ، مما يسمح باستخدام الأجسام المضادة الثانوية الخاصة بالفئة ، من نفس النوع. العديد من الأجسام المضادة الأولية أحادية النسيلة هي الفئران أو الفئران IgG1 أو IgG2a أو IgG2b. تسمح الأجسام المضادة الثانوية الخاصة بالنمط المتماثل بتعدد إرسال الأجسام المضادة النقية من نفس النوع. قد تكون قادرًا على زيادة خيارات التلوين عن طريق خلط هذه الطرق ومطابقتها ، ولكن تأكد دائمًا من أن الأجسام المضادة الثانوية الخاصة بك لا تتعرف على أهداف متعددة ويتم تنفيذ الضوابط الصحيحة.
5. التعويض
عند استخدام الأجسام المضادة الثانوية المسمى في لوحة متعددة الألوان ، لا يزال يتعين عليك إجراء التحكم الصحيح في التعويض للفلوروفور الثانوي. أسهل طريقة هي تنفيذ التحكم الفردي في تعويض التلوين باستخدام الجسم المضاد الأولي غير المقترن والجسم المضاد الثانوي المرتبط به. إذا ثبت أن هذا يمثل مشكلة ، بسبب التعبير المنخفض على سبيل المثال ، فيمكن استخدام حبات التعويض. اعتمادًا على قدرة الحبيبات على الارتباط بالجسم المضاد ، قد يكون من الممكن استخدامها مباشرة مع الجسم المضاد الثانوي ، أو مع الأجسام المضادة الأولية والثانوية. الخيار الثالث هو إجراء تعويض باستخدام جسم مضاد أولي مترافق مباشرة مع نفس الفلوروفور الذي سيتم استخدامه على الجسم المضاد الثانوي. ومع ذلك ، يجب أن يتم استخدام الفلوروفورات الترادفية مع هذه الطريقة بحذر شديد بسبب الاختلافات المتأصلة بين دفعات الفلوروفور الترادفية.
6. الستربتافيدين ككاشف ثانوي
في بعض الأحيان ، يتوفر فقط الجسم المضاد الأولي المعالج بالبيوتين ، وفي هذه الحالة ، فإن استخدام الستربتافيدين المسمى الفلورسنت مع مثل هذا الجسم المضاد سيجعله مناسبًا في قياس التدفق الخلوي دون الحاجة إلى أجسام مضادة ثانوية. يزيل هذا الخيار الحاجة إلى التحقق من التفاعل التبادلي للأجسام المضادة الثانوية مع الأجسام المضادة الأولية الأخرى ويمكن أن يوسع خيارات التلوين المشترك. ومع ذلك ، لا يزال من الضروري إجراء الضوابط السلبية والتعويضات الصحيحة.
7. ضوابط / نصائح التدفق العامة
ضوابط محددة مطلوبة لقياس التدفق الخلوي مثل عناصر التحكم غير الملوثة ، والنمط المتماثل ، والصلاحية ، والتعويض ، وضوابط FMO. يمكن أن يكون بناء الألواح متعددة الألوان أمرًا صعبًا ، كما أن اتباع الإرشادات المتعلقة باختيار الأداة والفلوروفور لهما نفس القدر من الأهمية عند إجراء تلطيخ غير مباشر. بالإضافة إلى هذه الضوابط والإرشادات القياسية لقياس التدفق الخلوي ، قد يتطلب استخدام الأجسام المضادة الثانوية ضوابط إضافية وتحسين كل من الأجسام المضادة وبروتوكول التلوين. يمكن تقييم الارتباط غير المحدد للجسم المضاد الثانوي عن طريق التلوين بالجسم المضاد الثانوي بدون الجسم المضاد الأولي المحدد ، إما بمفرده ، أو بالاشتراك مع الأجسام المضادة الأولية التي ليست الهدف المقصود. بدلاً من ذلك ، يمكن استخدام الجسم المضاد الأولي ، الذي يرتبط به الجسم المضاد الثانوي والمعروف أنه سلبي في عينتك. سيعطيك هذا فكرة عن الارتباط بكل من العينة والأجسام المضادة الأخرى في اللوحة ، مما يسمح لك بتقييم تلطيخ الخلفية غير المحدد.
لمزيد من المعلومات حول الأجسام المضادة الثانوية واستخدامها في تطبيقات مختلفة ، قم بزيارة صفحة الويب المخصصة للأجسام المضادة الثانوية.